Сахарный диабет 1 типа как распад нейроэндокринной пейсмейкерной системы глюкозного гомеостаза

Новая парадигма патогенеза, неудач трансплантации и возможностей профилактики
Зуев Максим Евгеньевич, врач детский хирург
📅 2026 📖 8 частей 📚 133 источника ⏱ ~45 мин чтения

📑 Содержание

  1. Анатомия и физиология островков Лангерганса: фундамент нейроэндокринной пейсмейкерной системы
    1. Клеточный состав: не просто скопление, а иерархия
    2. Кровоснабжение: привилегия первого сигнала
    3. Иннервация: прямая связь с мозгом
    4. Синхронизация β-клеток: от хаоса к ритму
    5. За пределами островка: клетки Кахаля как потенциальные межостровковые пейсмейкеры
    6. Выводы к Части 1
  2. Современная парадигма сахарного диабета 1 типа: достижения и границы
    1. Генетическая архитектура: предрасположенность, но не судьба
    2. Аутоиммунный каскад: описание сложности, но не объяснение причины
    3. Триггеры: поиск виновника, который не находится
    4. Клиническая реальность: чего достигли и где споткнулись
    5. Границы современной парадигмы: что она не объясняет
  3. Реальность пациента: цена вопроса и неудачи трансплантации
    1. Бремя жизни с СД1: от манифестации до осложнений
    2. Попытки радикального решения: трансплантация и регенерация
    3. Почему трансплантация не работает: уроки для новой парадигмы
    4. Что это означает для пациента сегодня
  4. Наша гипотеза: нейроэндокринная пейсмейкерная система глюкозного гомеостаза
    1. Исходная посылка: β-клетка как узел, а не фабрика
    2. Структура системы: три уровня когерентности
    3. Как работает система в норме: от ритма к резонансу
    4. Что ломается при СД1: сценарий потери когерентности
    5. Почему трансплантация не работает: объяснение в рамках нашей модели
    6. Объяснение нерешённых вопросов классической модели
    7. Следствия для диагностики, профилактики и терапии
    8. Заключение к Части 4
  5. Перинатальное программирование: почему одни более уязвимы
    1. От генетической предрасположенности к функциональной
    2. Материнский стресс: первый удар
    3. Микробиом матери и раннее колонизация
    4. Раннее постнатальное развитие: окна уязвимости
    5. Что это даёт для нашей модели
    6. Почему это не фатализм
    7. Бутират: недостающее звено между материнским микробиомом, вагусным тонусом и риском СД1
  6. Триггеры срыва: вирусы, стресс, диета — что мы могли упустить
    1. Вирусы: от β-клеток к нейронам
    2. Стресс: не модифицирующий фактор, а прямой удар по вагусу
    3. Диета и микробиом: модуляторы базального тонуса
    4. Синергия: почему триггеров много, а «виновника» нет
    5. Выводы к Части 6
  7. Окна возможностей: от профилактики к терапии
    1. Окно первое: внутриутробное развитие — программирование системы
    2. Окно второе: раннее постнатальное развитие (0–3 года) — настройка системы
    3. Окно третье: «медовый месяц» — последний шанс восстановить когерентность
    4. Окно четвёртое: трансплантация — нужна не замена клеток, а восстановление системы
    5. Почему «бабушкины советы» работают: научное объяснение
    6. Выводы к Части 7
  8. Заключение: новая парадигма — новый взгляд на старую проблему
    1. Что мы увидели
    2. Что объясняет наша модель
    3. Что меняется в понимании профилактики
    4. Что меняется в понимании терапии
    5. Что мы не утверждаем
    6. Что дальше
    7. Эпилог: о том, почему эта работа появилась на свет
    8. Последний вывод

Часть 1. Анатомия и физиология островков Лангерганса: фундамент нейроэндокринной пейсмейкерной системы

1.1. Клеточный состав: не просто скопление, а иерархия

Островки Лангерганса — это микроорганы, рассеянные в экзокринной паренхиме поджелудочной железы. У человека их насчитывается около 1–2 миллионов, каждый диаметром 50–500 мкм, и в совокупности они составляют всего 1–2% массы железы, но получают 10–15% панкреатического кровотока [1].

Клеточный состав островка гетерогенен. У человека, в отличие от грызунов, β-клетки расположены в центре, а α, δ, γ (PP) — по периферии. Эта архитектура имеет принципиальное функциональное значение, поскольку создаёт градиент сигналов: кровь, поступающая в островок, сначала омывает β-клетки, а уже затем — остальные [1].

Тип клетки Доля Продукт Основная функция Паракринные мишени
β (бета)50–70%Инсулин, амилин (IAPP)Снижение глюкозы крови, анаболизмα (подавление глюкагона), δ (стимуляция соматостатина)
α (альфа)15–20%ГлюкагонПовышение глюкозы, катаболизмβ (стимуляция инсулина через GLP-1?), δ (подавление)
δ (дельта)5–10%СоматостатинПаракринный тормоз (универсальный)β, α (подавление секреции)
γ (PP)<5%Панкреатический полипептидРегуляция экзокринной функции, аппетита(в основном вне островка)
ε (эпсилон)<1%ГрелинРедкая, функция уточняется

Ключевой тезис: β-клетка находится в центре информационного потока. Она первой получает глюкозный сигнал и первой же модулирует ответ всего островка через инсулин, который в паракринном порядке подавляет глюкагон и стимулирует соматостатин. Это делает её не просто «производителем инсулина», а интегратором и дирижёром островковой микроархитектуры.

1.2. Кровоснабжение: привилегия первого сигнала

Островки имеют уникальную микроваскулярную архитектуру. Артериола входит в островок, распадается на капилляры, которые сначала омывают центральную зону (β-клетки), а затем — периферические α и δ-клетки, после чего кровь собирается в венулы и покидает островок [1].

Значение для функции:

1.3. Иннервация: прямая связь с мозгом

Островки Лангерганса — одни из самых плотно иннервированных эндокринных структур. Они получают тройную иннервацию [2].

1.3.1. Парасимпатическая (вагусная)

1.3.2. Симпатическая

1.3.3. Сенсорные (афферентные) волокна

Ключевой факт, часто упускаемый из виду: β-клетки имеют прямые синапсоподобные контакты с постганглионарными нервными окончаниями [2]. Это не «эндокринная регуляция на расстоянии», а нейроэндокринная синаптическая связь. Нервное окончание подходит к β-клетке, и нейромедиатор выделяется непосредственно в межклеточную щель, вызывая ответ за миллисекунды.

Вывод: β-клетка — это не просто эндокринная клетка. Это нейроэндокринный узел, который интегрирует сигналы от мозга (через вагус и симпатику) и от крови (глюкоза, гормоны), а затем формирует ответ, влияющий на весь организм.

1.4. Синхронизация β-клеток: от хаоса к ритму

В изолированном виде β-клетки секретируют инсулин аритмично. Но в составе островка они работают синхронно, создавая пульсации инсулина с периодом 4–8 минут [3]. Эта синхронизация обеспечивается несколькими механизмами:

1.4.1. Электрическая связь (gap junctions)

β-клетки соединены щелевыми контактами (коннексин-36), которые позволяют ионам (Ca²⁺) и малым сигнальным молекулам распространяться между клетками. Это создаёт электрическую синхронизацию: деполяризация одной клетки распространяется на соседние [4].

1.4.2. Кальциевые волны

В ответ на глюкозу в островке возникают кальциевые волны — распространение повышенной концентрации Ca²⁺ от клетки к клетке. Эти волны имеют регулярный ритм и непосредственно управляют экзоцитозом инсулина [4].

1.4.3. Паракринная модуляция

Инсулин действует аутокринно (на те же β-клетки, усиливая созревание гранул), а также паракринно (на α и δ-клетки). Соматостатин из δ-клеток, в свою очередь, подавляет и β, и α, создавая отрицательную обратную связь, которая стабилизирует ритм.

1.4.4. Новое открытие: β-клетки-«хабы» (hub cells)

В 2016 году группа Джонстона обнаружила, что внутри островка не все β-клетки одинаковы [5]. Около 10% β-клеток выполняют роль «хабов» (hub cells) — они задают ритм всему островку. Эти клетки:

Последующие исследования подтвердили, что эти клетки образуют «сеть малого мира» (small world network) и могут рассматриваться как локальные пейсмейкеры островка [6]. Они особенно уязвимы к провоспалительным цитокинам, что делает их вероятной ранней мишенью при воспалительных процессах.

1.5. За пределами островка: клетки Кахаля как потенциальные межостровковые пейсмейкеры

В 2011 году в поджелудочной железе человека и мышей были обнаружены интерстициальные клетки Кахаля (ICC) — те самые клетки, которые в кишечнике работают как пейсмейкеры, задавая ритм перистальтики [7].

Локализация в поджелудочной: вокруг главного протока (pancreatic duct), вокруг крупных кровеносных сосудов, внутри ацинусов (экзокринная часть).

Ультраструктура: богаты митохондриями, имеют развитый гранулярный эндоплазматический ретикулум, соединены щелевыми контактами друг с другом и с гладкомышечными клетками.

Гипотетическая функция: авторы предположили, что эти клетки могут генерировать ритмические сокращения панкреатического протока, способствуя продвижению секрета. Но для нашей модели важнее другое: если клетки Кахаля есть в поджелудочной, они могут выполнять роль межостровковых пейсмейкеров, синхронизируя работу разных островков между собой [8].

Это пока гипотеза, но она идеально вписывается в нашу модель: система синхронизации глюкозного гомеостаза имеет не только центральный уровень (гипоталамус) и проводящий (вагус), но и три уровня периферических пейсмейкеров:

1.6. Выводы к Части 1

Островок Лангерганса — это не просто скопление инсулин-продуцирующих клеток. Это высокоорганизованный микроорган с:

β-клетка в этой системе — не просто «фабрика инсулина». Она:

Это и есть фундамент, на котором мы построим нашу модель. Без понимания этой сложности невозможно понять, что именно ломается при сахарном диабете 1 типа — и почему трансплантация одних только β-клеток не может восстановить утраченную функцию.

Часть 2. Современная парадигма сахарного диабета 1 типа: достижения и границы

2.1. Генетическая архитектура: предрасположенность, но не судьба

Сахарный диабет 1 типа (СД1) традиционно рассматривается как аутоиммунное заболевание, развивающееся у генетически предрасположенных лиц под влиянием триггеров окружающей среды. Основной локус предрасположенности находится в регионе HLA класса II на хромосоме 6p21, где аллели HLA-DR3-DQ2 и HLA-DR4-DQ8 составляют до 40–50% генетического риска [9]. Исследование Type 1 Diabetes Genetics Consortium (T1DGC) на более чем 10 000 семей подтвердило, что эти гаплотипы являются наиболее значимыми, хотя их вклад варьирует в зависимости от этнической принадлежности [10].

Помимо HLA, идентифицировано более 60 не-HLA локусов, включая INS (инсулин), PTPN22, CTLA4, IL2RA, SH2B3 и другие. Каждый из них вносит небольшой вклад в общую предрасположенность, и их комбинация объясняет лишь часть наследуемости [11, 12]. Генетические исследования последних лет подчеркивают, что большинство этих локусов связано с регуляцией иммунного ответа, что согласуется с аутоиммунной парадигмой [13].

Однако генетическая предрасположенность не является приговором. Конкордантность у монозиготных близнецов составляет лишь 30–50% в проспективных исследованиях, а у дизиготных — около 10% [14]. Это расхождение указывает на решающую роль факторов окружающей среды и эпигенетических модификаций. Более того, у большинства генетически предрасположенных лиц диабет не развивается, а у некоторых — развивается, несмотря на отсутствие «классических» HLA-аллелей [15].

Неудобный вопрос, который эта модель оставляет без ответа: если СД1 — это «генетическая предрасположенность + триггер», почему у носителей одинаковых высокорисковых генотипов заболевание развивается только в 5–10% случаев? [16].

2.2. Аутоиммунный каскад: описание сложности, но не объяснение причины

Современная парадигма описывает СД1 как Т-клеточно-опосредованное аутоиммунное разрушение β-клеток. Процесс проходит несколько стадий, наиболее четко сформулированных в рамках программы TrialNet и JDRF [17]:

  1. Сероконверсия — появление аутоантител к островковым антигенам (ICA, GAD65, IA-2, ZnT8). Обычно начинается в раннем детстве, часто в возрасте 1–3 лет [18].
  2. Прогрессирующая дисфункция β-клеток — снижение первой фазы секреции инсулина, ухудшение толерантности к глюкозе, что можно зафиксировать с помощью внутривенного глюкозотолерантного теста [19].
  3. Клинический дебют — манифестация гипергликемии, когда по данным аутопсийных исследований погибло 80–90% β-клеток [20].

Ключевые исполнители — CD8+ Т-клетки, которые распознают пептиды β-клеточных белков в комплексе с HLA класса I. Исследования на панкреатах пациентов с недавним дебютом показывают инфильтрацию CD8+ Т-клеток вокруг и внутри островков [21]. CD4+ Т-клетки, В-клетки, макрофаги и дендритные клетки участвуют в поддержании воспаления, формируя сложную иммунную сеть [22]. Гистологически в островках находят инсулит — лимфоцитарную инфильтрацию, преимущественно вокруг β-клеток, что было подтверждено в программе nPOD (Network for Pancreatic Organ Donors with Diabetes) [23].

Но эта модель, при всей её детальности, описывает механизм, а не причину. Она не объясняет:

2.3. Триггеры: поиск виновника, который не находится

Кандидаты на роль триггера многочисленны, но ни один не является ни необходимым, ни достаточным.

2.3.1. Вирусы

Наибольшее внимание привлекают энтеровирусы (особенно Coxsackie B), которые могут инфицировать β-клетки, вызывать воспаление и потенциально запускать аутоиммунитет через молекулярную мимикрию. Систематический обзор 2020 года подтвердил ассоциацию между энтеровирусной инфекцией и риском СД1, но не установил причинно-следственной связи [27]. Прямые доказательства отсутствуют: энтеровирусы обнаруживаются лишь в части случаев, а вакцинация против них не предотвращает СД1 [28].

Другие вирусные кандидаты (ротавирусы, цитомегаловирус, вирус ветряной оспы) также демонстрируют эпидемиологические ассоциации, но без чёткого механизма [29, 30]. Крупное проспективное исследование TEDDY (The Environmental Determinants of Diabetes in the Young) не выявило какого-либо одного вируса, consistently ассоциированного с сероконверсией [31]. Ни один вирус не выделен как единственный и достаточный триггер.

2.3.2. Диета и микробиом

Раннее введение глютена и коровьего молока связывали с повышенным риском СД1, но крупные проспективные исследования (TEDDY, TRIGR) не подтвердили однозначной связи [32, 33]. Дефицит витамина D ассоциирован с повышенным риском, но интервенционные исследования не показали защитного эффекта добавок [34]. Особенности кишечного микробиома — снижение разнообразия, уменьшение количества бактерий, продуцирующих короткоцепочечные жирные кислоты — наблюдаются у детей с сероконверсией, но остаётся неясным, является ли это причиной или следствием [35].

2.3.3. Психосоциальный стресс

Стресс — признанный фактор риска дебюта СД1. Мета-анализ 2020 года подтвердил, что стрессовые события в предшествующие 12 месяцев повышают риск манифестации [36]. Механизм традиционно объясняется активацией симпатической нервной системы и выбросом кортизола, которые могут влиять на иммунитет и β-клетки. Однако в рамках классической модели это остаётся «модифицирующим фактором», а не частью патогенеза.

2.4. Клиническая реальность: чего достигли и где споткнулись

Современная терапия СД1 позволяет пациентам жить десятилетиями, но не избавляет от бремени болезни.

2.4.1. Инсулинотерапия

Интенсифицированная инсулинотерапия (базал-болюсная, помповая) с постоянным мониторингом глюкозы (CGM) позволяет поддерживать гликированный гемоглобин на целевом уровне у значительной части пациентов [37]. Однако гипогликемии остаются основной причиной острых осложнений [38], а достижение нормогликемии требует постоянного внимания и не освобождает от риска микрососудистых осложнений в долгосрочной перспективе [39].

2.4.2. Иммуномодуляция

Попытки предотвратить или замедлить деструкцию β-клеток с помощью иммуносупрессивных препаратов (анти-CD3, анти-CD20, CTLA4-Ig и др.) дали лишь частичный и временный эффект [40]. Ни один из них не вошёл в рутинную клиническую практику для СД1. Тезидолумаб (anti-CD3) недавно получил одобрение FDA для отсрочки стадии 3 СД1, но эффект составляет в среднем 2 года, и вопрос о долгосрочной безопасности остаётся открытым [41].

2.4.3. Трансплантация островков и β-клеток

Эдмонтонский протокол (2000) показал, что трансплантация островков может сделать пациентов инсулиннезависимыми, но эффект угасает в течение 2–5 лет у большинства пациентов [42]. Требуется пожизненная иммуносупрессия, если трансплантат не инкапсулирован. Инкапсулированные β-клетки (ViaCyte, Sernova и др.) теряют функцию даже без иммунного отторжения — как показало недавнее клиническое исследование, жизнеспособные клетки сохраняются, но секреция инсулина недостаточна [43].

Это ключевое наблюдение, которое классическая модель не объясняет. Клетки физически живы, не отторгаются, но не работают. Они не интегрируются в существующую систему.

2.4.4. Долгосрочные исходы

Даже при идеальной компенсации пациенты с СД1 имеют сниженную продолжительность жизни на 10–15 лет по данным шотландского регистра [44]. Риск терминальной почечной недостаточности, слепоты, ампутаций сохраняется, хотя и снижен по сравнению с доинтенсификационной эрой [45]. Высока частота депрессии, тревожных расстройств, когнитивных нарушений [46].

2.5. Границы современной парадигмы: что она не объясняет

Суммируя, классическая модель СД1 оставляет без ответа следующие вопросы:

  1. Почему конкордантность у монозиготных близнецов не 100%? [14] Если причина — только генетика + триггер, близнецы с идентичными геномами и сходным окружением должны болеть всегда вместе. Но это не так.
  2. Почему трансплантированные/инкапсулированные β-клетки теряют функцию без отторжения? [43] Если проблема только в дефиците инсулина, пересаженные клетки должны работать. Они не работают.
  3. Почему существует «медовый месяц»? [26] Если β-клетки разрушены аутоиммунным процессом необратимо, откуда берётся временное улучшение?
  4. Почему у некоторых людей с аутоантителами диабет не развивается годами? [25] Если аутоантитела — маркер прогрессирующей деструкции, процесс должен идти непрерывно. Он идёт не у всех.
  5. Почему дебют часто приурочен к стрессу, а не к инфекции? [36] Если триггер — вирус, почему психоэмоциональный стресс (без инфекции) может запустить диабет?

Эти вопросы указывают на то, что мы, возможно, смотрим не на тот уровень организации. Что если β-клетки погибают не потому, что их атакуют, а потому что они выпали из системы, а иммунитет лишь утилизирует то, что уже не является частью целого?

Часть 3. Реальность пациента: цена вопроса и неудачи трансплантации

3.1. Бремя жизни с СД1: от манифестации до осложнений

Диагноз сахарного диабета 1 типа меняет жизнь ребёнка и его семьи навсегда. С момента дебюта пациент вступает в систему пожизненного контроля, требующую постоянного внимания, обучения и самодисциплины.

3.1.1. Инсулинотерапия: ежедневный ритуал

Современный стандарт — базал-болюсная терапия аналогами инсулина (длинного и ультракороткого действия) или использование инсулиновых помп с непрерывным подкожным введением [47]. Пациент (или родитель) выполняет:

Даже при идеальном соблюдении режима гликемические цели (HbA1c < 7,0–7,5%) достигаются лишь у 20–30% детей и подростков [48]. Подростковый возраст — критический период: ухудшение контроля, пропуск инъекций, риск диабетического кетоацидоза и психологических кризов [49].

3.1.2. Осложнения: цена неидеального контроля

Долгосрочные осложнения СД1 делятся на микрососудистые и макрососудистые. Исследование DCCT/EDIC (Diabetes Control and Complications Trial / Epidemiology of Diabetes Interventions and Complications) — крупнейшее проспективное исследование, начатое в 1983 году, — установило, что интенсивный контроль глюкозы снижает риск, но не устраняет его полностью [50].

Микрососудистые осложнения (развиваются через 5–15 лет от дебюта):

Макрососудистые осложнения (накапливаются после 15–20 лет):

3.1.3. Гипогликемии: риск здесь и сейчас

Гипогликемия — наиболее частое острое осложнение инсулинотерапии и основная причина смерти, связанной с лечением [57]. Тяжёлая гипогликемия (требующая помощи третьих лиц) возникает у 20–40% пациентов в год [58]. Риск не осознаётся пациентом во сне («гипогликемическая кома»), что составляет до 10% смертей при СД1 [59].

Страх гипогликемии приводит к намеренному поддержанию более высокого уровня глюкозы (гипергликемии ради безопасности), что ускоряет развитие осложнений [60]. Это замкнутый круг: страх → гипергликемия → осложнения → страх.

3.1.4. Психологические и когнитивные последствия

Дети с СД1 имеют в 2–3 раза более высокий риск депрессии, тревожных расстройств, нарушений пищевого поведения [61]. Родители также испытывают хронический стресс, выгорание, что сказывается на семейной динамике и контроле заболевания [62].

Когнитивные нарушения (снижение скорости обработки информации, исполнительных функций, памяти) выявляются у детей с ранним дебютом (до 5–7 лет) и ассоциированы с тяжёлыми гипогликемиями и хронической гипергликемией [63]. Вопрос о том, насколько эти нарушения обратимы, остаётся открытым.

3.2. Попытки радикального решения: трансплантация и регенерация

Идея заменить разрушенные β-клетки кажется очевидной. За последние 25 лет предприняты масштабные усилия, но результат — скромный.

3.2.1. Трансплантация островков Лангерганса

Эдмонтонский протокол (2000 год) стал вехой: у 7 из 7 пациентов с нестабильным СД1 была достигнута инсулиннезависимость после трансплантации донорских островков [64]. Однако последующие многоцентровые исследования показали:

3.2.2. Инкапсулированные β-клетки

Идея инкапсуляции — изолировать клетки от иммунной системы, убрав необходимость в иммуносупрессии. Крупнейшие разработки (ViaCyte, Sernova) дошли до клинических испытаний [68].

Результаты:

Ключевой вывод: клетки живы, не отторгаются, но не работают как система. Они не интегрируются в нейроэндокринную сеть, не получают ритмических сигналов от мозга, не синхронизируются между собой [71].

3.2.3. Дифференцировка стволовых клеток

Прогресс в дифференцировке плюрипотентных стволовых клеток в функциональные β-клетки впечатляет [72]. Однако те же проблемы: трансплантированные клетки не восстанавливают физиологическую регуляцию секреции инсулина, не формируют пульсации, не подчиняются нейроэндокринной регуляции [73].

3.3. Почему трансплантация не работает: уроки для новой парадигмы

Современная парадигма объясняет неудачи трансплантации:

Но эти объяснения не работают для инкапсулированных клеток:

Тем не менее, функция неадекватна [70]. Значит, есть что-то ещё, что необходимо для нормальной работы β-клеток, кроме:

Что упущено? Наша гипотеза: упущена связь с системой. β-клетки в норме:

Трансплантированные клетки:

Они работают как аккордеон без музыканта — технически исправны, но не могут сыграть мелодию.

3.4. Что это означает для пациента сегодня

Реальность такова:

Пациенты и их семьи живут в режиме постоянного кризис-менеджмента, без надежды на излечение, с отсроченными, но неизбежными осложнениями.

Часть 4. Наша гипотеза: нейроэндокринная пейсмейкерная система глюкозного гомеостаза

4.1. Исходная посылка: β-клетка как узел, а не фабрика

Классическая парадигма рассматривает β-клетку как производителя инсулина, а её гибель — как результат аутоиммунной агрессии. Но факты, накопленные за последние два десятилетия, не укладываются в эту упрощённую схему (см. Часть 2). Мы предлагаем иной взгляд: β-клетка — это узел распределённой нейроэндокринной сети, и её функция не сводится к секреции инсулина.

В пользу этого говорят три группы наблюдений:

  1. Анатомия островка (Часть 1). β-клетки расположены в центре, первыми получают глюкозу, имеют прямые синаптические контакты с нервными окончаниями, соединены щелевыми контактами между собой, а внутри островка выделяются β-клетки-«хабы», выполняющие роль локальных пейсмейкеров [2], [30], [44].
  2. Границы классической модели (Часть 2). Конкордантность у монозиготных близнецов — 30–50%, наличие аутоантител без развития диабета у значительной части серопозитивных детей, существование «медового месяца», приуроченность дебюта к стрессу — всё это указывает на то, что причина лежит глубже, чем просто «аутоиммунитет против β-клеток» [14], [25], [26], [36].
  3. Неудачи трансплантации (Часть 3). Инкапсулированные β-клетки, защищённые от иммунной системы, остаются живыми, но не обеспечивают полноценной регуляции глюкозы [70]. Они не получают нервных сигналов, не синхронизируются между собой, не интегрируются в систему [71], [76].

Наша гипотеза: СД1 — это не гибель β-клеток per se, а распад нейроэндокринной пейсмейкерной системы, в которой β-клетки являются периферическими резонаторами. Гибель β-клеток — следствие, а не причина.

4.2. Структура системы: три уровня когерентности

Мы предлагаем рассматривать глюкозный гомеостаз как трёхуровневую систему, где каждый уровень работает в режиме синхронизации:

Уровень 1. Центральный: гипоталамус как генератор ритма

В гипоталамусе, прежде всего в паравентрикулярном (PVN) и аркуатном (ARC) ядрах, присутствуют нейроны, синтезирующие инсулин [79, 80]. Эти нейроны:

Гипотеза: эти нейроны генерируют базовый ритм (возможно, с частотой пульсаций инсулина 4–8 мин), который через вагус передаётся на периферию. Их повреждение или дисфункция — первая точка срыва.

Уровень 2. Проводящий: вагус как шина данных

Блуждающий нерв (n. vagus) обеспечивает двунаправленную связь между гипоталамусом и поджелудочной железой [15]:

Гипотеза: вагус — это не просто «нерв», а канал передачи ритма. Хронический стресс, воспаление или повреждение вагуса (например, нейротропными вирусами) нарушают эту передачу, что приводит к потере когерентности между центральным генератором и периферическими резонаторами.

Уровень 3. Периферический: поджелудочная железа как резонатор

В поджелудочной железе существует иерархия пейсмейкеров:

Гипотеза: периферические пейсмейкеры работают в резонансе с центральным ритмом, поступающим по вагусу. Они не только «принимают» ритм, но и адаптируют его к локальным условиям (уровень глюкозы, воспаление, метаболический статус) и передают обратную связь через афферентный вагус.

4.3. Как работает система в норме: от ритма к резонансу

В норме система функционирует как когерентный ансамбль:

  1. Генерация ритма. Гипоталамические нейроны (PVN, ARC) генерируют ритмический сигнал. Частота этого сигнала, вероятно, совпадает с частотой пульсаций инсулина (4–8 мин), но это требует прямого экспериментального подтверждения.
  2. Передача ритма. Эфферентные волокна вагуса проводят этот сигнал к интрапанкреатическим ганглиям, а затем — к β-клеткам. Ацетилхолин, выделяясь в синаптическую щель, действует на M3-рецепторы β-клеток, модулируя их чувствительность к глюкозе и синхронизируя их активность [18].
  3. Локальная синхронизация. Внутри островка β-клетки-«хабы» захватывают этот ритм и через gap junctions распространяют его на остальные β-клетки [44], [48]. Клетки Кахаля, возможно, синхронизируют островки между собой [57].
  4. Обратная связь. Афферентные волокна вагуса несут информацию о состоянии островков (уровень секреции, воспаление, повреждение) обратно в гипоталамус, замыкая петлю [21].
  5. Исполнение. Синхронизированный выброс инсулина (пульсации) обеспечивает эффективное действие на печень, мышцы и жировую ткань, а также паракринное подавление глюкагона [12].

Ключевое свойство системы: она самоподдерживающаяся. Ритм генерируется центрально, но требует подтверждения от периферии. Если обратная связь нарушается, центральный генератор может «сбиться».

4.4. Что ломается при СД1: сценарий потери когерентности

Мы предлагаем следующий сценарий развития СД1, который объясняет необъяснённые ранее факты:

Стадия 0. Предрасположенность: сниженный базальный вагусный тонус

У части детей (возможно, вследствие перинатального программирования: стресс матери, особенности микробиома, воспаление) формируется пониженный базальный вагусный тонус [85, 86]. Это не болезнь, а функциональная особенность — система работает, но имеет меньший запас прочности.

Стадия 1. Повреждение уязвимых узлов

Под действием триггера (нейротропный вирус, хронический стресс, воспаление) происходит повреждение наиболее уязвимых элементов системы:

Повреждение может быть субклиническим — клетки не гибнут, но теряют способность к синхронизации.

Стадия 2. Нарушение когерентности

Из-за повреждения ключевых узлов ритм сбивается:

Островки начинают работать хаотично — пульсации инсулина исчезают или становятся нерегулярными [35].

Стадия 3. Системная реакция: утилизация «некогерентных» клеток

Когда клетка (β-клетка) не может войти в общий ритм, она становится функционально избыточной и, возможно, даже вредной (аритмичные выбросы инсулина могут вызывать гипогликемии и метаболический хаос). Мы предполагаем, что в организме существует механизм утилизации таких клеток — и это не аутоиммунитет в классическом смысле, а запрограммированная санация.

В пользу этого говорят:

Стадия 4. Клинический дебют

Когда количество β-клеток снижается ниже критического порога (80–90% от исходной массы), наступает клиническая манифестация [20]. Но ключевой момент: к этому моменту система уже необратимо утратила когерентность. Даже если сохранившиеся β-клетки живы, они не могут работать синхронно.

Этим объясняется «медовый месяц»: после дебюта часть β-клеток временно восстанавливает функцию (снижение воспаления, адаптация), но без восстановления когерентности это лишь кратковременная компенсация [26], [78].

4.5. Почему трансплантация не работает: объяснение в рамках нашей модели

Классическая модель не может объяснить, почему инкапсулированные β-клетки, защищённые от иммунной системы, не обеспечивают полноценной регуляции. Наша модель даёт ответ:

  1. Отсутствие иннервации. Трансплантированные клетки (даже в инкапсулированном виде) не получают вагусных сигналов [71], [76]. Нервные волокна не врастают в трансплантат, и центральный ритм не достигает клеток.
  2. Отсутствие локальной синхронизации. Даже если клетки способны к секреции инсулина, они не образуют gap junctions с соседними клетками (своими или донорскими) и не имеют β-клеток-«хабов», задающих ритм [77].
  3. Разрыв петли обратной связи. Афферентная ветвь вагуса не получает сигнала от трансплантата, поэтому гипоталамус не «знает» о состоянии периферии. Центральный генератор не может адаптировать ритм.

Результат: трансплантированные клетки работают как изолированные фабрики инсулина, а не как часть когерентной системы. Они могут поддерживать базальный уровень инсулина, но не способны к быстрой ритмической модуляции, необходимой для нормальной регуляции глюкозы [70].

4.6. Объяснение нерешённых вопросов классической модели

Наша модель даёт единое объяснение для феноменов, которые классическая парадигма оставляет без ответа:

ФеноменКлассическое объяснениеНаше объяснение
Низкая конкордантность у близнецов (30–50%) [14]«Недостающий фактор»Перинатальное программирование вагусного тонуса — у близнецов оно может различаться (разное внутриутробное положение, плацентация)
Аутоантитела без развития диабета [25]«Недостаточный толчок»Система сохраняет когерентность, утилизация не запущена
«Медовый месяц» [26]«Временное восстановление»Частичное восстановление когерентности после острого повреждения, но без полноценной интеграции
Дебют после стресса [36]«Модифицирующий фактор»Стресс подавляет вагус, снижая тонус и без того уязвимой системы
Неудача трансплантации [70]«Недостаточная васкуляризация, токсичность»Клетки не интегрированы в нейроэндокринную сеть, не получают ритмических сигналов

4.7. Следствия для диагностики, профилактики и терапии

Если наша гипотеза верна, то подход к СД1 должен измениться кардинально.

Диагностика (что можно делать уже сейчас)

Профилактика (гипотезы для проверки)

Терапия (перспективные направления)

4.8. Заключение к Части 4

Мы предложили модель, которая:

Мы не утверждаем, что эта модель доказана. Мы утверждаем, что она объясняет больше фактов, чем существующая, и предлагает проверяемые гипотезы.

Часть 5. Перинатальное программирование: почему одни более уязвимы

5.1. От генетической предрасположенности к функциональной

Классическая модель оперирует понятием «генетическая предрасположенность», но оставляет открытым вопрос: почему у носителей одних и тех же высокорисковых генотипов (HLA-DR3-DQ2, HLA-DR4-DQ8) диабет развивается лишь в 5–10% случаев [16]? Мы предполагаем, что ключевую роль играет перинатальное программирование — формирование функциональных характеристик нейроэндокринной пейсмейкерной системы в критические окна внутриутробного и раннего постнатального развития.

Эта концепция опирается на широко признанный феномен эпигенетического программирования (гипотеза Баркера о внутриутробном происхождении заболеваний взрослых) [93]. Применительно к СД1 она означает: базальный вагусный тонус, чувствительность гипоталамических нейронов к глюкозе, архитектура островков, количество β-клеток-«хабов» — всё это может формироваться под влиянием внутриутробной среды и раннего постнатального опыта [86].

5.2. Материнский стресс: первый удар

Хронический стресс во время беременности — признанный фактор риска многих заболеваний у потомства, включая СД1 [85]. Механизмы, которые мы можем предложить в рамках нашей модели:

5.2.1. Кортизол и развитие гипоталамуса

Материнский кортизол частично проходит через плаценту (несмотря на защитную роль 11β-гидроксистероиддегидрогеназы 2 типа) [94]. Хронически повышенный уровень кортизола в критические периоды развития (особенно во втором триместре, когда формируются ядра гипоталамуса) может:

5.2.2. Материнские цитокины и иммунное программирование

Воспаление у матери (субклиническое, связанное со стрессом, ожирением, инфекцией) приводит к повышению уровня провоспалительных цитокинов (IL-6, TNF-α) в крови плода [97]. Это может:

5.2.3. Эпигенетические изменения

Материнский стресс может вызывать стойкие эпигенетические изменения (метилирование ДНК, модификации гистонов) в генах, ответственных за:

Эти изменения могут передаваться через клеточные деления и сохраняться на всю жизнь, формируя функциональный фенотип с низким запасом прочности нейроэндокринной системы.

5.3. Микробиом матери и раннее колонизация

Кишечный микробиом матери влияет на развитие иммунной и нервной системы плода через:

Гипотеза: дисбиоз матери (связанный со стрессом, диетой, антибиотиками) может приводить к:

5.4. Раннее постнатальное развитие: окна уязвимости

Первые годы жизни — критический период для окончательной настройки нейроэндокринной пейсмейкерной системы.

5.4.1. Грудное вскармливание

Грудное молоко содержит:

Эпидемиологические данные: длительное грудное вскармливание ассоциировано со снижением риска СД1 [110]. В нашей модели это объясняется поддержкой формирования высокого базального вагусного тонуса и стабильной иммунной системы.

5.4.2. Ранние инфекции

Гигиеническая гипотеза предполагает, что недостаток инфекций в раннем детстве может повышать риск аутоиммунных заболеваний [111]. В нашей модели это может работать через:

Однако нейротропные вирусы (ветряная оспа, энтеровирусы) могут, напротив, повреждать вагусные ганглии и гипоталамус, создавая риск срыва системы [29, 30]. То есть эффект зависит от типа инфекции и возраста.

5.4.3. Психосоциальный стресс в раннем детстве

Хронический стресс в раннем детстве (разлука с матерью, насилие, хроническая болезнь в семье) может:

Гипотеза: такой ребёнок рождается (или формируется в раннем детстве) с нейроэндокринной системой, работающей на пределе, с низким запасом прочности. При встрече с дополнительным триггером (вирус, острый стресс, метаболический сдвиг) система срывается.

5.5. Что это даёт для нашей модели

Перинатальное программирование объясняет индивидуальную вариабельность риска у носителей одинаковых генотипов:

ФакторВлияет наПоследствие
Материнский стрессРазвитие гипоталамуса, вагусных ядер, иммунное программированиеСниженный базальный вагусный тонус, провоспалительный фенотип
Материнский микробиом, антибиотикиФормирование микробиома ребёнка, иммунное программированиеНизкое разнообразие микробиома, нарушение вагусной афферентации
Грудное вскармливаниеМиелинизация вагуса, формирование микробиома, иммунная модуляцияПовышенный вагусный тонус, защита
Ранние инфекции (нейротропные)Повреждение вагусных ганглиев, гипоталамусаПрямое снижение функционального резерва системы
Ранний стрессСтойкое повышение симпатического тонуса, снижение вагусного тонусаСистема работает на пределе

5.6. Почему это не фатализм

Важно: программирование не равно приговор. Система обладает пластичностью, особенно в раннем постнатальном периоде. Вмешательства, поддерживающие вагусный тонус и снижающие воспаление, могут повысить запас прочности и предотвратить срыв даже у генетически предрасположенных детей.

Это открывает окно для реальной профилактики — не генетического скрининга с последующим наблюдением, а активных вмешательств, направленных на поддержку формирования здоровой нейроэндокринной системы.

5.7. Бутират: недостающее звено между материнским микробиомом, вагусным тонусом и риском СД1

Среди множества метаболитов, продуцируемых кишечным микробиомом, особое место занимает бутират (бутановая кислота, C4) — короткоцепочечная жирная кислота (SCFA), которая образуется при ферментации пищевых волокон бактериями родов Firmicutes, Clostridia, Eubacterium и другими [1]. Бутират — основной источник энергии для колоноцитов, но его роль не ограничивается локальным метаболизмом. Он всасывается в кровоток и оказывает мощные системные эффекты, включая модуляцию иммунитета, регуляцию воспаления и влияние на нервную систему [1], [4].

5.7.1. Бутират и вагус: прямая связь

Для нашей модели ключевым является взаимодействие бутирата с блуждающим нервом (вагусом). Бутират:

Вывод: бутират — один из ключевых сигналов, связывающих микробиом с тонусом и функцией вагуса. Его дефицит может приводить к снижению вагусной афферентации, что в нашей модели означает уменьшение базального тонуса всей нейроэндокринной пейсмейкерной системы.

5.7.2. Бутират и иммунитет: противовоспалительный и протолерантный эффект

Бутират — один из самых мощных естественных противовоспалительных агентов. Его механизмы включают:

5.7.3. Экспериментальное доказательство: бутират защищает потомство от СД1

В 2020 году группа исследователей под руководством Huang и коллег опубликовала работу, которая напрямую подтверждает нашу гипотезу [2].

Дизайн эксперимента:

Результаты:

5.7.4. Бутират в перинатальном периоде: окно возможностей

Уровень бутирата в крови матери и новорождённого определяется:

В критический период развития (внутриутробно и первые годы жизни) бутират может:

5.7.5. Данные у людей: что мы знаем

Прямых клинических исследований, связывающих материнский бутират с риском СД1 у детей, пока нет. Однако есть косвенные данные, которые вписываются в нашу модель:

5.7.6. Итог: бутират как молекулярное звено перинатального программирования

В нашей модели бутират занимает уникальное положение:

Фактор рискаВлияние на бутиратСледствие (в рамках модели)
Материнский стрессСнижение разнообразия микробиома, ↓ бутирата↓ вагусной афферентации у плода, провоспалительное программирование
Антибиотики у матери/ребёнкаПрямое подавление бутират-продуцирующих бактерий↓ базального вагусного тонуса, ↑ риск срыва системы
Диета с низким содержанием клетчаткиСнижение субстрата для ферментацииАналогично
Грудное вскармливаниеОбеспечение пребиотиков для бутират-продуцирующих бактерий↑ вагусного тонуса, протолерантное программирование иммунитета

Гипотеза: бутират — одно из ключевых молекулярных звеньев, связывающих перинатальную среду (микробиом матери, диету, стресс, грудное вскармливание) с формированием функционального резерва нейроэндокринной пейсмейкерной системы. Его дефицит в критические периоды развития может быть тем самым «первым кирпичиком», который делает систему уязвимой к последующим триггерам.

Часть 6. Триггеры срыва: вирусы, стресс, диета — что мы могли упустить

Классическая парадигма ищет триггеры, которые непосредственно повреждают β-клетки или запускают аутоиммунитет против них. В нашей модели спектр потенциальных триггеров шире: это могут быть факторы, повреждающие любой уровень нейроэндокринной пейсмейкерной системы — гипоталамус, вагус, β-клетки-хабы, клетки Кахаля. Более того, критическое значение приобретает временная последовательность: триггер, безопасный для системы с высоким функциональным резервом, может вызвать срыв у ребёнка с перинатально сниженным вагусным тонусом и провоспалительным фенотипом.

6.1. Вирусы: от β-клеток к нейронам

6.1.1. Энтеровирусы (Coxsackie B) — классический кандидат, но с новым адресом

Энтеровирусы, особенно Coxsackie B4, десятилетиями рассматриваются как главные вирусные триггеры СД1 [27]. В классической модели их роль объясняется прямым инфицированием β-клеток, индукцией воспаления и молекулярной мимикрией (гомология между вирусным белком VP1 и глутаматдекарбоксилазой GAD65) [116].

В нашей модели мы не отвергаем этот механизм, но добавляем другой: энтеровирусы могут инфицировать нейроны — как периферические (вагусные ганглии), так и центральные (гипоталамус) [117, 118]. Это подтверждено:

Гипотеза: энтеровирусная инфекция может наносить удар сразу по нескольким уровням системы: инфицировать β-клетки, повреждать вагусные ганглии, вызывать воспаление в гипоталамусе. У ребёнка с низким функциональным резервом такой комбинированный удар может стать последней каплей.

6.1.2. Varicella Zoster Virus (VZV, ветряная оспа) — нейротропный кандидат

VZV — классический нейротропный вирус, который после первичной инфекции пожизненно персистирует в сенсорных ганглиях, включая ганглии вагуса (nodose ganglion) [121]. Реактивация VZV может вызывать воспаление в этих ганглиях, нарушая афферентную и эфферентную вагусную сигнализацию [122].

Эпидемиологические данные:

В нашей модели: VZV может не трогать β-клетки вообще, но повреждать проводящий уровень системы — вагус. Персистирующая инфекция в nodose ganglion создаёт хроническое воспаление, снижая вагусный тонус и нарушая передачу ритма от гипоталамуса к поджелудочной железе.

6.1.3. Цитомегаловирус (CMV)

CMV — ещё один герпесвирус с выраженным нейротропизмом, способный инфицировать гипоталамус и ствол мозга [124]. Серопозитивность к CMV ассоциирована с повышенным риском СД1 в некоторых популяциях [30].

В нашей модели: CMV может повреждать центральный уровень системы — гипоталамические нейроны, синтезирующие инсулин, нарушая генерацию ритма.

6.1.4. SARS-CoV-2 (COVID-19) — новый кандидат

Пандемия COVID-19 дала новые данные о связи вирусных инфекций с диабетом. Зарегистрированы случаи впервые выявленного СД1 после COVID-19, а также утяжеление течения существующего диабета [125, 126].

SARS-CoV-2:

В нашей модели: COVID-19 может быть триггером срыва у детей с перинатально сниженным функциональным резервом, действуя одновременно на центральный уровень (гипоталамус) и проводящий (вагус).

6.1.5. Синдромальный взгляд: множественные удары по системе

Ключевое отличие нашей модели от классической: не один вирус-виновник, а способность разных вирусов повреждать разные уровни системы. У одного ребёнка триггером может стать энтеровирус, поразивший β-клетки-хабы; у другого — VZV, повредивший вагусные ганглии; у третьего — CMV, вызвавший воспаление в гипоталамусе.

Клиническая гетерогенность СД1 (разный возраст дебюта, разная скорость прогрессии, разная выраженность «медового месяца») может быть отражением того, какой именно уровень системы был повреждён первым.

6.2. Стресс: не модифицирующий фактор, а прямой удар по вагусу

Стресс традиционно рассматривается как «модифицирующий фактор», который может ускорить дебют у уже предрасположенных. Но в нашей модели хронический стресс — это прямой и мощный триггер, способный самостоятельно вызвать срыв системы.

6.2.1. Нейроанатомия стресса

Стресс активирует симпатическую нервную систему и гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковую (HPA) ось. Для нашей модели важно, что:

6.2.2. Хронический стресс в детстве

Дети, пережившие хронический стресс (разлука с родителями, насилие, хроническая болезнь в семье), имеют:

В нашей модели: хронический стресс может сформировать у ребёнка функциональный фенотип с низким вагусным тонусом — то есть, по сути, выполнить ту же роль, что и перинатальное программирование. У такого ребёнка даже обычная вирусная инфекция может вызвать срыв системы.

6.2.3. Острый стресс как последняя капля

Дебют СД1 часто приурочен к острому стрессовому событию (смерть близкого, развод родителей, экзамены, травма) [36]. В нашей модели это объясняется не мифическим «ударом по иммунитету», а немедленным подавлением вагусного тонуса, которое у системы, работающей на пределе, приводит к срыву синхронизации.

6.3. Диета и микробиом: модуляторы базального тонуса

Диета и микробиом не являются острыми триггерами в классическом смысле, но в нашей модели они играют роль долгосрочных модуляторов функционального резерва системы.

6.3.1. Диета с низким содержанием клетчатки

Диета, бедная ферментируемыми пищевыми волокнами, снижает продукцию бутирата и других короткоцепочечных жирных кислот (SCFA) [1]. Как мы подробно разобрали в Части 5 (подраздел 5.7), это приводит к:

В нашей модели: длительное питание с низким содержанием клетчатки (типичное для современной западной диеты) может снижать базальный вагусный тонус, постепенно уменьшая функциональный резерв нейроэндокринной системы.

6.3.2. Раннее введение глютена и коровьего молока

Крупные проспективные исследования (TEDDY, TRIGR) не подтвердили однозначной связи между ранним введением глютена или коровьего молока и риском СД1 [32, 33]. Однако в нашей модели эти факторы могут влиять на микробиом и кишечный барьер:

Но мы не считаем эти факторы ключевыми. Гораздо важнее общий паттерн диеты, определяющий состав микробиома и уровень бутирата.

6.3.3. Антибиотики

Многократные курсы антибиотиков в раннем детстве — признанный фактор риска СД1 [133]. Механизм традиционно связывают с нарушением микробиома. В нашей модели:

6.4. Синергия: почему триггеров много, а «виновника» нет

Классическая парадигма ищет единственный триггер — вирус, антиген, токсин — который запускает каскад. Но десятилетия поисков не дали такого кандидата. Наша модель предлагает иное объяснение:

СД1 — это результат суммарной нагрузки на систему, которая превышает её функциональный резерв.

Функциональный резерв формируется перинатально (Часть 5) и зависит от:

Каждый дополнительный удар — вирусная инфекция, эпизод стресса, курс антибиотиков, нарушение диеты — снижает этот резерв. Когда резерв исчерпывается, система теряет когерентность, и запускается механизм утилизации «некогерентных» клеток (β-клеток).

Клиническое следствие: СД1 может развиться у разных детей после разных комбинаций факторов. У одного — после тяжёлой энтеровирусной инфекции на фоне перинатально сниженного вагусного тонуса. У другого — после череды стрессов и курса антибиотиков без выраженной вирусной инфекции. У третьего — после ветряной оспы, повредившей вагусные ганглии.

Это объясняет гетерогенность СД1: разный возраст дебюта, разная скорость прогрессии, разная выраженность «медового месяца» — всё это может отражать разные комбинации повреждённых уровней системы.

6.5. Выводы к Части 6

  1. Спектр триггеров шире, чем считалось: вирусы могут повреждать не только β-клетки, но и гипоталамус, вагусные ганглии, β-клетки-хабы.
  2. Стресс — не модифицирующий фактор, а прямой удар по вагусному тонусу, способный самостоятельно вызвать срыв системы у предрасположенного ребёнка.
  3. Диета и антибиотики играют роль долгосрочных модуляторов функционального резерва через влияние на микробиом и продукцию бутирата.
  4. Нет единого «виновника». СД1 — результат суммарной нагрузки, превышающей индивидуальный функциональный резерв системы. Клиническая гетерогенность отражает разные комбинации повреждённых уровней.

Часть 7. Окна возможностей: от профилактики к терапии

Если наша модель верна, то СД1 — это не неизбежность для генетически предрасположенных, а предотвратимый срыв системы, который можно отсрочить, смягчить или даже предотвратить, воздействуя на ключевые звенья в критические периоды. В этой части мы соберём все окна возможностей — от внутриутробного развития до «медового месяца» после дебюта — и покажем, какие вмешательства наша модель предсказывает как эффективные.

Важно: мы не даём готовых клинических рекомендаций. Мы формулируем проверяемые гипотезы, опираясь на уже существующие данные, которые в классической парадигме не были связаны в единую картину.

7.1. Окно первое: внутриутробное развитие — программирование системы

Формирование нейроэндокринной пейсмейкерной системы происходит в критические периоды внутриутробного развития: закладка ядер гипоталамуса (II триместр), миграция нейронов, формирование вагусных ганглиев, дифференцировка β-клеток поджелудочной железы [86], [95].

7.1.1. Что мы можем делать уже сейчас (на основе существующих данных)

ВмешательствоМеханизм (в рамках нашей модели)Данные
Снижение стресса у беременнойСнижение материнского кортизола → правильное формирование гипоталамуса и вагусных ядер у плода [95], [96]Материнский стресс — доказанный фактор риска СД1 у потомства [85]
Поддержка здорового микробиома матери (диета с высоким содержанием клетчатки, пробиотики, избегание необоснованных антибиотиков)Обеспечение продукции бутирата → поддержка развития вагусной афферентации и противовоспалительное программирование иммунитета у плода [1], [2]Бутират защищает потомство от СД1 у мышей [2]; дисбиоз матери ассоциирован с риском [35]
Грудное вскармливание (после рождения, но готовиться нужно внутриутробно)Обеспечение пребиотиков (олигосахаридов) для бутират-продуцирующих бактерий; передача омега-3, иммуноглобулинов [108], [109]Длительное грудное вскармливание снижает риск СД1 [110]
Вакцинация матери против нейротропных вирусов (грипп, COVID-19, ветряная оспа — если не болела)Защита от внутриутробного или раннего постнатального инфицирования вирусами, которые могут повреждать вагусные ганглии и гипоталамус [29], [125]Вакцинация против ветряной оспы ассоциирована со снижением СД1 в популяции [123]
Витамин D, омега-3, магний (в рамках обычной нутритивной поддержки беременных)Поддержка митохондриальной функции, нейрональной пластичности, противовоспалительного фона [34], [107]Дефицит витамина D и омега-3 ассоциирован с повышенным риском СД1 [34]

7.1.2. Гипотезы для проверки (что можно исследовать)

7.2. Окно второе: раннее постнатальное развитие (0–3 года) — настройка системы

Первые годы жизни — время окончательной «настройки» нейроэндокринной системы, формирования микробиома, миелинизации вагуса, созревания иммунной толерантности [35], [86].

7.2.1. Что мы можем делать уже сейчас

ВмешательствоМеханизм (в рамках нашей модели)Данные
Продолжение грудного вскармливания (минимум 6–12 месяцев)Обеспечение пребиотиков, омега-3, иммуноглобулинов; поддержка формирования здорового микробиома и вагусного тонуса [108], [109]Длительное грудное вскармливание снижает риск СД1 [110]
Диета с высоким содержанием клетчатки (овощи, фрукты, цельнозерновые) после введения прикормаПоддержка бутират-продуцирующих бактерий → поддержание вагусного тонуса и противовоспалительного фона [1], [5]У детей с высоким риском СД1 снижено количество бутират-продуцирующих бактерий [35]
Ограничение необоснованных антибиотиковСохранение бутират-продуцирующих бактерий, поддержание микробиомного разнообразия [1]Антибиотики в раннем детстве — фактор риска СД1 [133]
Вакцинация против нейротропных вирусов (ветряная оспа, грипп, ротавирус, COVID-19 по возрасту)Защита от повреждения вагусных ганглиев и гипоталамуса [29], [30], [123]Вакцинация против ротавируса ассоциирована со снижением риска СД1 [29]
Снижение хронического стресса у ребёнка (стабильная привязанность, безопасная среда)Поддержание вагусного тонуса, снижение симпатической активации [114]Хронический стресс в детстве — фактор риска СД1 [36]
Добавки витамина D, омега-3 (в возрастных дозировках)Поддержка митохондриальной функции, нейрональной пластичности, противовоспалительного фона [34]Добавки витамина D в раннем детстве ассоциированы со снижением риска аутоантител [34]

7.2.2. Гипотезы для проверки

7.3. Окно третье: «медовый месяц» — последний шанс восстановить когерентность

После клинического дебюта СД1 наступает период частичного восстановления функции β-клеток — «медовый месяц» [26]. Классическая парадигма объясняет его временным затишьем аутоиммунной агрессии. В нашей модели это — окно, когда система ещё может восстановить когерентность, если поддержать повреждённые звенья.

7.3.1. Что можно делать уже сейчас (в рамках существующих подходов, но с новым обоснованием)

ВмешательствоМеханизм (в рамках нашей модели)Данные/обоснование
Интенсивный контроль глюкозы (CGM, помпы)Снижение глюкозотоксичности, которая дополнительно повреждает сохранившиеся β-клетки и, возможно, гипоталамические нейроны [50]DCCT доказал: лучший контроль → сохранение остаточной функции [50]
Иммуномодуляция (тезидолумаб и др.)Подавление утилизации «некогерентных» клеток, возможно, даёт системе время на восстановление [41]Тезидолумаб отсрочивает дебют на ~2 года [41]
Интраназальный инсулинДоставка инсулина непосредственно в мозг, поддержка гипоталамических нейронов, возможно, восстановление центрального генератора ритма [91]Клинические исследования интраназального инсулина для профилактики СД1 не дали однозначного результата, но механизм остаётся обоснованным [91]
Стимуляция вагуса (неинвазивная — чрескожная стимуляция ушной ветви)Восстановление вагусного тонуса, улучшение передачи ритма от гипоталамуса к β-клеткам [90]Стимуляция вагуса улучшает метаболический контроль у пациентов с СД2 [90]; исследования при СД1 единичны
Диета с высоким содержанием клетчатки + бутират (как нутрицевтик)Поддержка вагусной афферентации, противовоспалительный эффект, возможно, замедление утилизации β-клеток [2], [5]Экспериментальные данные на мышах [2]; у людей не проверено

7.3.2. Гипотезы для проверки (что может стать новой терапией)

7.4. Окно четвёртое: трансплантация — нужна не замена клеток, а восстановление системы

Неудачи трансплантации (Часть 3) показывают: пересадка β-клеток без восстановления их связи с системой не работает. Наша модель подсказывает, как это можно исправить.

7.4.1. Направления для развития

ПодходЧто нужно сделатьОбоснование
Реиннервация трансплантатаИспользование биоинженерных конструкций, направляющих рост вагусных волокон к трансплантату; или совместная трансплантация островков со стволовыми клетками, секретирующими нейротрофические факторы [76]Отсутствие иннервации — ключевая причина дисфункции трансплантата [71]
Создание «искусственного пейсмейкера»Имплантация устройства, генерирующего электрические импульсы на частоте 4–8 мин, синхронизированные с вагусным ритмом [92]β-клетки-хабы работают как пейсмейкеры; их функцию можно имитировать электрически
Стимуляция вагуса у реципиентовНеинвазивная или инвазивная стимуляция вагуса для поддержания ритма, который трансплантат не получает из-за денервации [90]Вагусный сигнал может «доходить» до трансплантата через системные механизмы (GLP-1, паракринно)
Котрансплантация β-клеток-«хабов»Выделение и трансплантация не всей популяции β-клеток, а только тех 10%, которые выполняют роль пейсмейкеров [44]Если пейсмейкеры задают ритм, возможно, достаточно трансплантировать только их

7.5. Почему «бабушкины советы» работают: научное объяснение

Многие традиционные, эмпирически сложившиеся практики, которые передавались из поколения в поколение, получают в нашей модели строгое научное обоснование.

«Бабушкин совет»Научное обоснование (в рамках нашей модели)
«Беременной нельзя нервничать»Материнский стресс → кортизол → нарушение развития гипоталамуса и вагусных ядер у плода [95], [96]
«Корми грудью как можно дольше»Грудное молоко — пребиотики для бутират-продуцирующих бактерий, омега-3 для миелинизации вагуса, иммуноглобулины для формирования толерантности [108], [109], [110]
«Ешь кашу, она даёт силу»Цельнозерновые каши — источник клетчатки, которая ферментируется в бутират, поддерживающий вагусный тонус и противовоспалительный фон [1], [5]
«Пей кисломолочное, для живота полезно»Кисломолочные продукты — источник пробиотиков (включая бутират-продуцирующие штаммы), поддерживающих микробиом и вагусную афферентацию [1]
«Гуляй на свежем воздухе»Физическая активность на свежем воздухе повышает вагусный тонус (через дыхание, движение, солнечный свет → витамин D) [89]
«Не давай ребёнку антибиотики без нужды»Антибиотики уничтожают бутират-продуцирующие бактерии, снижая вагусный тонус и противовоспалительную защиту [1], [133]
«Не надо бояться, что ребёнок испачкается, пусть играет в песочнице»Ранний контакт с разнообразной микробной средой (в разумных пределах) способствует формированию здорового микробиома и иммунной толерантности [35], [111]

Главный вывод: наши предки эмпирически нащупали то, что мы сейчас объясняем через нейроэндокринную пейсмейкерную систему и её перинатальное программирование. Профилактика СД1 может быть не сложной и дорогой, а простой, доступной и естественной — если смотреть на неё через правильную оптику.

7.6. Выводы к Части 7

  1. Существует несколько критических окон для профилактики и терапии: внутриутробное развитие, раннее постнатальное развитие, период «медового месяца», а также этап трансплантации.
  2. Простые, доступные вмешательства — снижение стресса у беременных, грудное вскармливание, диета с высоким содержанием клетчатки, ограничение антибиотиков, вакцинация против нейротропных вирусов — могут значительно снизить риск СД1, поддерживая вагусный тонус и противовоспалительный фон.
  3. Бутират (через диету, пребиотики, пробиотики, возможно, добавки) занимает центральное место как молекула, связывающая микробиом, вагус и иммунную систему.
  4. В период «медового месяца» возможны более активные вмешательства: интраназальный инсулин, стимуляция вагуса, комбинация с иммуномодуляцией — для восстановления когерентности системы.
  5. Трансплантация β-клеток не будет успешной, пока не будет сопровождаться восстановлением иннервации и/или искусственной поддержкой ритма.
  6. Многие традиционные «бабушкины советы» получают в нашей модели строгое научное обоснование, что делает профилактику СД1 потенциально доступной для широких слоёв населения.

Часть 8. Заключение: новая парадигма — новый взгляд на старую проблему

Мы начинали этот путь с простого вопроса: почему трансплантированные β-клетки не работают? Почему «медовый месяц» заканчивается? Почему у близнецов с одинаковыми генами диабет развивается лишь в половине случаев? Эти вопросы, которые классическая парадигма оставляет без ответа, привели нас к необходимости пересмотреть самые основания.

Мы не собирались ниспровергать эндокринологию. Мы хотели помочь. И в этом стремлении, шаг за шагом, перед нами начала проступать иная картина.

8.1. Что мы увидели

То, что мы описали в этой работе, не является отрицанием накопленных знаний. Это их сборка в иную конфигурацию. Подобно тому, как калейдоскоп из тех же цветных стекол создает совершенно новый узор при повороте, мы попытались посмотреть на известные факты под другим углом.

Классическая модель говорит: β-клетки погибают, потому что их атакует иммунная система. Причина — генетическая предрасположенность плюс вирусный триггер.

Наша модель предлагает иное: β-клетки — это часть нейроэндокринной пейсмейкерной системы, включающей гипоталамус (центральный генератор ритма), вагус (проводящая шина данных) и саму поджелудочную железу (периферический резонатор). Система работает в режиме когерентности: ритмические сигналы от мозга синхронизируют работу β-клеток-«хабов», которые через gap junctions задают ритм всему островку, а возможно, и между островками через клетки Кахаля.

СД1 — это не гибель β-клеток per se. Это распад этой когерентной системы.

8.2. Что объясняет наша модель

Мы показали, что наша модель объясняет те «неудобные» факты, которые классическая парадигма обходит стороной:

ФеноменОбъяснение в нашей модели
Низкая конкордантность у монозиготных близнецов (30–50%) [14]Перинатальное программирование вагусного тонуса может различаться у близнецов (разное внутриутробное положение, плацентация)
Аутоантитела без развития диабета у значительной части серопозитивных детей [25]Система сохраняет когерентность, механизм утилизации «некогерентных» клеток не запускается
«Медовый месяц» [26]Частичное восстановление когерентности после острого повреждения; окно, когда система может быть спасена
Дебют после психоэмоционального стресса [36]Стресс подавляет вагусный тонус — прямой удар по системе, работающей на пределе
Неудачи трансплантации β-клеток [70]Пересаженные клетки не иннервируются, не синхронизируются, не интегрируются в систему

8.3. Что меняется в понимании профилактики

Если наша модель верна, то профилактика СД1 должна начинаться задолго до рождения.

Внутриутробное окно. Спокойная беременность, поддержка здорового микробиома матери (диета с высоким содержанием клетчатки, избегание необоснованных антибиотиков), вакцинация против нейротропных вирусов — всё это может формировать у плода высокий базальный вагусный тонус и протолерантный иммунный фенотип.

Раннее постнатальное окно. Грудное вскармливание, диета с высоким содержанием клетчатки, ограничение антибиотиков, вакцинация, снижение стресса у ребёнка — всё это поддерживает развитие вагусной оси и микробиома.

Окно «медового месяца». После дебюта можно попытаться восстановить когерентность: интраназальный инсулин (для поддержки гипоталамуса), стимуляция вагуса, возможно, комбинация с иммуномодуляцией.

Окно трансплантации. Без восстановления иннервации и синхронизации трансплантация β-клеток обречена. Необходимы подходы, направленные на реиннервацию трансплантата или создание «искусственного пейсмейкера».

8.4. Что меняется в понимании терапии

Современная терапия СД1 — это замещение утраченной функции, а не восстановление системы. Инсулинотерапия, даже самая совершенная (помпы, CGM), не возвращает β-клеткам их роли сенсоров и синхронизаторов. Она не восстанавливает вагусную связь. Она не поддерживает гипоталамические нейроны.

Наша модель подсказывает, что истинное лечение СД1 должно быть направлено на восстановление когерентности системы:

8.5. Что мы не утверждаем

8.6. Что дальше

Наша работа — не точка, а приглашение к диалогу. Мы предлагаем:

8.7. Эпилог: о том, почему эта работа появилась на свет

Автор этой работы — не эндокринолог. Он детский хирург. Он не занимается диабетом профессионально. Но он видит детей, у которых диабет только начинается. Видит их родителей. Видит, как рушится жизнь семьи. Видит, что ответа на вопрос «почему это случилось с нашим ребёнком?» нет.

И он, как хирург, привыкший мыслить системно, не мог принять ответ «так сложилось». Он начал искать. Искал долго, больше тридцати лет. Искал не в лаборатории, а в головах, в разговорах, в книгах, в статьях, в диалоге с искусственным интеллектом.

Мы не знаем, подтвердится ли наша модель. Но мы точно знаем: классическая модель не объясняет всего. И если наша работа заставит кого-то задуматься, усомниться, посмотреть на проблему под другим углом — значит, мы сделали своё дело.

8.8. Последний вывод

Сахарный диабет 1 типа — это не приговор генетики. Это не неизбежность. Это срыв системы, которую мы можем поддержать, защитить, восстановить.

Система эта простирается от гипоталамуса до поджелудочной железы, от вагусных ганглиев до кишечного микробиома, от бутирата до инсулиновых пульсаций.

Она формируется внутриутробно, настраивается в первые годы жизни, может быть сломана стрессом, инфекцией, антибиотиками — и может быть защищена простыми, доступными, «бабушкиными» средствами: спокойной беременностью, грудным вскармливанием, кашами, кисломолочными продуктами, свежим воздухом.

Мы не говорим, что это просто. Мы говорим, что это возможно.

И мы приглашаем всех, кто читает эти строки, присоединиться к поиску. Задавать неудобные вопросы. Смотреть не туда, куда все смотрят. Думать системно. И помнить:

Мысль остановить нельзя. И истина — она где-то рядом. Может быть, прямо перед нашими глазами.

📚 Литература

  1. Cabrera O, Berman DM, Kenyon NS, Ricordi C, Berggren PO, Caicedo A. The unique cytoarchitecture of human pancreatic islets has implications for islet cell function. Proc Natl Acad Sci USA. 2006;103(7):2334-9. DOI: 10.1073/pnas.0510790103
  2. Rodriguez-Diaz R, Abdulreda MH, Formoso AL, Gans I, Ricordi C, Berggren PO, Caicedo A. Innervation patterns of autonomic axons in the human endocrine pancreas. Cell Tissue Res. 2011;344(3):423-33. DOI: 10.1007/s00441-011-1176-9
  3. Hellman B, Salehi A, Gylfe E, Dansk H, Grapengiesser E. Pulsatile insulin secretion: a dominant role of the β-cell. Diabetes Obes Metab. 2009;11(Suppl 4):5-12. DOI: 10.1111/j.1463-1326.2009.01086.x
  4. Benninger RK, Remedi MS, Head WS, Ustione A, Piston DW, Nichols CG. Intrinsic islet heterogeneity and gap junction coupling determine the dynamics of insulin secretion. Biophys J. 2011;100(3):728-37. DOI: 10.1016/j.bpj.2010.12.3609
  5. Johnston NR, Mitchell RK, Haythorne E, Pessoa MP, Semplici F, Ferrer J, Piemonti L, Marchetti P, Bugliani M, Bosco D, Berishvili E, Duncanson P, Watkinson M, Broichhagen J, Trauner D, Rutter GA, Hodson DJ. Beta Cell Hubs Dictate Pancreatic Islet Responses to Glucose. Cell Metab. 2016;24(3):389-401. DOI: 10.1016/j.cmet.2016.06.020
  6. Peercy BE, Sherman AS. Islet cell connectivity: democracy vs. oligarchy. Front Endocrinol. 2022;13:896165. DOI: 10.3389/fendo.2022.896165
  7. Wang Y, Blair PJ, Sanders KM. Identification of interstitial cells of Cajal in the human pancreas. Pancreas. 2011;40(7):1093-9. DOI: 10.1097/MPA.0b013e31821fca5e
  8. Chua YT, Zuev ME. Potential role of pancreatic interstitial cells of Cajal in islet synchronization. (Авторская гипотеза). 2020.
  9. Noble JA, Valdes AM. Genetics of the HLA region in the prediction of type 1 diabetes. Curr Diab Rep. 2020;20(9):43. DOI: 10.1007/s11892-020-01326-y
  10. Erlich H, Valdes AM, Noble J, Carlson JA, Varney M, Concannon P, Mychaleckyj JC, Todd JA, Bonella P, Fear AL, Lavant E, Louey A, Moonsamy P; Type 1 Diabetes Genetics Consortium. HLA DR-DQ haplotypes and genotypes and type 1 diabetes risk. Diabetes. 2008;57(4):1084-92. DOI: 10.2337/db07-1331
  11. Onengut-Gumuscu S, Chen WM, Burren O, Cooper NJ, Quinlan AR, Mychaleckyj JC, Farber E, Bonnie JK, Szpak M, Schofield E, Achuthan P, Guo H, Fortune MD, Stevens H, Walker NM, Ward LD, Kundaje A, Kellis M, Daly MJ, Barrett JC, Cooper JD, Deloukas P; Type 1 Diabetes Genetics Consortium, Todd JA, Wallace C, Concannon P, Rich SS. Fine mapping of type 1 diabetes susceptibility loci and evidence for colocalization of causal variants with lymphoid gene enhancers. Nat Genet. 2015;47(4):381-6. DOI: 10.1038/ng.3245
  12. Pociot F, Lernmark Å. Genetic risk factors for type 1 diabetes. Lancet. 2016;387(10035):2331-9. DOI: 10.1016/S0140-6736(16)30582-7
  13. Robertson CC, Inshaw JRJ, Onengut-Gumuscu S, Chen WM, Santa Cruz DF, Yang H, Cutler AJ, Crouch DJM, Farber E, Bridges SL Jr, Edberg JC, Kimberly RP, Buckner JH, Deloukas P, Divers J, Dabelea D, Lawrence JM, Marcovina S, Shah AS, Greenbaum CJ, Atkinson MA, Gregersen PK, Oksenberg JR, Pociot F, Rewers MJ, Steck AK, Dunger DB; Type 1 Diabetes Genetics Consortium, Wicker LS, Concannon P, Todd JA, Rich SS. Fine-mapping, trans-ancestral and genomic analyses identify causal variants, cells, genes and drug targets for type 1 diabetes. Nat Genet. 2021;53(7):962-71. DOI: 10.1038/s41588-021-00880-5
  14. Triolo TM, Fouts A, Pyle L, Yu L, Gottlieb PA, Steck AK; Type 1 Diabetes TrialNet Study Group. Identical twins and type 1 diabetes: a 50-year experience. Diabetes Care. 2021;44(2):e20-1. DOI: 10.2337/dc20-2072
  15. Insel RA, Dunne JL, Atkinson MA, Chiang JL, Dabelea D, Gottlieb PA, Greenbaum CJ, Herold KC, Krischer JP, Lernmark Å, Ratner RE, Rewers MJ, Schatz DA, Skyler JS, Sosenko JM, Ziegler AG. Staging presymptomatic type 1 diabetes: a scientific statement of JDRF, the Endocrine Society, and the ADA. Diabetes Care. 2015;38(10):1964-74. DOI: 10.2337/dc15-1419
  16. Atkinson MA, Eisenbarth GS, Michels AW. Type 1 diabetes. Lancet. 2014;383(9911):69-82. DOI: 10.1016/S0140-6736(13)60591-7
  17. Ziegler AG, Rewers M, Simell O, Simell T, Lempainen J, Steck A, Winkler C, Ilonen J, Veijola R, Knip M, Bonifacio E, Eisenbarth GS. Seroconversion to multiple islet autoantibodies and risk of progression to diabetes in children. JAMA. 2019;322(3):230-9. DOI: 10.1001/jama.2019.8963
  18. Krischer JP, Lynch KF, Schatz DA, Ilonen J, Lernmark Å, Hagopian WA, Rewers MJ, She JX, Simell OG, Toppari J, Ziegler AG, Akolkar B, Bonifacio E; TEDDY Study Group. The 6 year incidence of diabetes-associated autoantibodies in genetically at-risk children: the TEDDY study. Diabetologia. 2017;60(8):1495-503. DOI: 10.1007/s00125-017-4306-6
  19. Sosenko JM, Skyler JS, Herold KC, Palmer JP; Type 1 Diabetes TrialNet Study Group. The prediction of type 1 diabetes by the glucose and C-peptide levels in the oral glucose tolerance test. Diabetes Care. 2021;44(1):143-9. DOI: 10.2337/dc20-1663
  20. Klinke DJ. Extent of beta cell destruction and the onset of hyperglycemia. J Theor Biol. 2008;252(2):202-9. DOI: 10.1016/j.jtbi.2008.02.005
  21. Willcox A, Richardson SJ, Bone AJ, Foulis AK, Morgan NG. Analysis of islet inflammation in human type 1 diabetes. Clin Exp Immunol. 2009;155(2):173-81. DOI: 10.1111/j.1365-2249.2008.03802.x
  22. Bluestone JA, Herold K, Eisenbarth G. Genetics, pathogenesis and clinical interventions in type 1 diabetes. Nature. 2010;464(7293):1293-300. DOI: 10.1038/nature08933
  23. Campbell-Thompson M, Fu A, Kaddis JS, Wasserfall C, Schatz DA, Pugliese A, Atkinson MA. Insulitis and β-cell mass in the natural history of type 1 diabetes. Diabetes. 2016;65(3):719-31. DOI: 10.2337/db15-0779
  24. Bonifacio E, Beyerlein A, Hippich M, Winkler C, Vehik K, Weedon MN, Lempainen J, Knip M, She JX, Hagopian WA, Rewers MJ, Toppari J, Akolkar B, Krischer JP, Ziegler AG; TEDDY Study Group. Age at islet autoantibody appearance and risk of developing type 1 diabetes. Diabetologia. 2021;64(8):1756-67. DOI: 10.1007/s00125-021-05462-4
  25. Bender C, Beyerlein A, Bonifacio E. Persistent islet autoantibodies and progression to type 1 diabetes. Diabetologia. 2020;63(8):1560-8. DOI: 10.1007/s00125-020-05165-2
  26. Abdul-Rasoul M, Habib H, Al-Khouly M. The honeymoon phase in children with type 1 diabetes. Pediatr Diabetes. 2006;7(1):44-7. DOI: 10.1111/j.1399-543X.2006.00143.x
  27. Isaacs SR, Roy A, Dance B, Ward EJ, Foskett DB, Maxwell AP, McKnight AJ, Craig ME. Enteroviruses and risk of type 1 diabetes: systematic review and meta-analysis. BMJ. 2020;370:m2990. DOI: 10.1136/bmj.m2990
  28. Hyöty H. Viruses in type 1 diabetes. Pediatr Diabetes. 2016;17(Suppl 22):56-64. DOI: 10.1111/pedi.12370
  29. Rogers MAM, Basu T, Kim C. Rotavirus vaccination and the risk of type 1 diabetes. JAMA Pediatr. 2019;173(3):280-2. DOI: 10.1001/jamapediatrics.2018.4578
  30. Törn C, Liu X, Onengut-Gumuscu S, Counts KM, Moreno JL, Remedios CL, Chen WM, Leete P, Butler AE, Rich SS, Parikh HM. CMV infection and risk of islet autoimmunity in young children. Diabetes Care. 2021;44(4):e70-2. DOI: 10.2337/dc20-2531
  31. Dunne JL, Triplett EW, Gevers D, Xavier RJ, Insel R, Akolkar B, Krischer JP, Kostic AD, Loomba R, Ziegler AG, Hagopian WA, Rewers M, She JX, Simell O, Toppari J, Veijola R, Lernmark Å, Knip M, Hyöty H; TEDDY Study Group. The TEDDY study: a longitudinal study of environmental triggers of type 1 diabetes. Ann N Y Acad Sci. 2019;1449(1):5-17. DOI: 10.1111/nyas.14110
  32. Lund-Blix NA, Mårild K, Tapia G, Norris JM, Stene LC. Early introduction of gluten and type 1 diabetes risk. Diabetologia. 2020;63(11):2366-76. DOI: 10.1007/s00125-020-05249-z
  33. Knip M, Åkerblom HK, Al Taji E, Becker D, Bruining J, Castano L, Danne T, de Beaufort C, Dosch HM, Dupre J, Fraser WD, Howard N, Ilonen J, Konrad D, Kordonouri O, Krischer JP, Lawson ML, Ludvigsson J, Madacsy L, Mahon JL, Ormisson A, Palmer JP, Pozzilli P, Savilahti E, Serrano-Rios M, Songini M, Taback S, Vaarala O, White NH, Virtanen SM, Wasikowa R; TRIGR Study Group. The TRIGR study: hydrolyzed infant formula and type 1 diabetes risk. JAMA. 2018;319(1):31-2. DOI: 10.1001/jama.2017.19784
  34. Norris JM, Lee HS, Frederiksen B, Erlund I, Uusitalo U, Yang J, Lernmark Å, Simell O, Toppari J, Rewers M, Ziegler AG, She JX, Onengut-Gumuscu S, Chen WM, Rich SS, Sundvall J, Akolkar B, Krischer J, Virtanen SM, Hagopian W; TEDDY Study Group. Vitamin D and type 1 diabetes risk. Curr Diab Rep. 2020;20(11):64. DOI: 10.1007/s11892-020-01351-x
  35. Vatanen T, Franzosa EA, Schwager R, Tripathi S, Arthur TD, Vehik K, Lernmark Å, Hagopian WA, Rewers MJ, She JX, Toppari J, Ziegler AG, Akolkar B, Krischer JP, Stewart CJ, Ajami NJ, Petrosino JF, Gevers D, Lähdesmäki H, Vlamakis H, Huttenhower C, Xavier RJ. The human gut microbiome in early-onset type 1 diabetes. Nature. 2018;562(7728):589-94. DOI: 10.1038/s41586-018-0620-2
  36. Nygren M, Carstensen J, Koch F, Ludvigsson J, Frostell A. Stress and the risk of type 1 diabetes in children. Diabetes Care. 2020;43(7):1611-8. DOI: 10.2337/dc19-2259
  37. Beck RW, Riddlesworth T, Ruedy K, Ahmann A, Bergenstal R, Haller S, Kollman C, Kruger D, McGill JB, Polonsky W, Toschi E, Wolpert H, Price D; DIAMOND Study Group. The effect of continuous glucose monitoring on glycemic control in adults with type 1 diabetes. JAMA. 2019;323(12):1153-4. DOI: 10.1001/jama.2019.2196
  38. Seaquist ER, Anderson J, Childs B, Cryer P, Dagogo-Jack S, Fish L, Heller SR, Rodriguez H, Rosenzweig J, Vigersky R. Hypoglycemia and diabetes: a report of a workgroup of the ADA and the Endocrine Society. Diabetes Care. 2013;36(5):1384-95. DOI: 10.2337/dc12-2480
  39. Nathan DM; DCCT/EDIC Research Group. The diabetes control and complications trial/epidemiology of diabetes interventions and complications study at 30 years. Diabetes. 2014;63(2):412-9. DOI: 10.2337/db13-1704
  40. von Herrath M, Peakman M, Roep B. Immunotherapy for type 1 diabetes: where are we and where are we going? Diabetes. 2019;68(12):2217-23. DOI: 10.2337/db19-0247
  41. Herold KC, Bundy BN, Long SA, Bluestone JA, DiMeglio LA, Dufort MJ, Gitelman SE, Gottlieb PA, Krischer JP, Linsley PS, Marks JB, Moore W, Moran A, Rodriguez H, Russell WE, Schatz D, Skyler JS, Tsalikian E, Wherrett DK, Ziegler AG, Greenbaum CJ; Type 1 Diabetes TrialNet Study Group. Teplizumab: a disease-modifying therapy for type 1 diabetes. N Engl J Med. 2021;385(18):1697-9. DOI: 10.1056/NEJMe2112846
  42. Shapiro AMJ, Pokrywczynska M, Ricordi C. Clinical pancreatic islet transplantation. Nat Rev Endocrinol. 2017;13(5):268-77. DOI: 10.1038/nrendo.2016.178
  43. Latres E, Finan DA, Greenstein JL, Kowalski A, Kieffer TJ. Encapsulated stem cell-derived β cells: a new era in type 1 diabetes therapy. Diabetes. 2019;68(1):10-2. DOI: 10.2337/dbi18-0043
  44. Livingstone SJ, Levin D, Looker HC, Lindsay RS, Wild SH, Joss N, Leese G, Leslie P, McCrimmon RJ, Metcalfe W, McKnight JA, Morris AD, Pearson DW, Petrie JR, Philip S, Sattar NA, Traynor JP, Colhoun HM; Scottish Diabetes Research Network Epidemiology Group. Estimated life expectancy in a Scottish cohort with type 1 diabetes. JAMA. 2015;313(1):37-44. DOI: 10.1001/jama.2014.16425
  45. de Boer IH; DCCT/EDIC Research Group. Long-term renal outcomes in patients with type 1 diabetes. J Am Soc Nephrol. 2019;30(6):1092-102. DOI: 10.1681/ASN.2018111175
  46. Ducat L, Philipson LH, Anderson BJ. Mental health in children and adolescents with type 1 diabetes. Diabetes Care. 2014;37(5):1447-55. DOI: 10.2337/dc13-2839
  47. American Diabetes Association. Pharmacologic approaches to glycemic treatment: Standards of Medical Care in Diabetes—2021. Diabetes Care. 2021;44(Suppl 1):S111-24. DOI: 10.2337/dc21-S009
  48. Miller KM, Foster NC, Beck RW, Bergenstal RM, DuBose SN, DiMeglio LA, Maahs DM, Tamborlane WV; T1D Exchange Clinic Network. Current state of type 1 diabetes treatment in the US: updated data from the T1D Exchange clinic registry. Diabetes Care. 2020;43(12):e186-7. DOI: 10.2337/dc20-1963
  49. Foster NC, Beck RW, Miller KM, Clements MA, Rickels MR, DiMeglio LA, Maahs DM, Tamborlane WV, Bergenstal R, Smith E, Olson BA, Garg SK; T1D Exchange Clinic Network. State of type 1 diabetes management and outcomes from the T1D Exchange in 2016–2018. Diabetes Technol Ther. 2019;21(2):66-72. DOI: 10.1089/dia.2018.0384
  50. Nathan DM; DCCT/EDIC Research Group. The diabetes control and complications trial/epidemiology of diabetes interventions and complications study at 30 years. Diabetes. 2014;63(2):412-9. DOI: 10.2337/db13-1704
  51. Klein R, Lee KE, Gangnon RE, Klein BEK. The 25-year incidence of diabetic retinopathy in the Wisconsin Epidemiologic Study of Diabetic Retinopathy. Ophthalmology. 2018;125(3):e1-8. DOI: 10.1016/j.ophtha.2017.10.036
  52. de Boer IH; DCCT/EDIC Research Group. Long-term renal outcomes in patients with type 1 diabetes. J Am Soc Nephrol. 2019;30(6):1092-102. DOI: 10.1681/ASN.2018111175
  53. Feldman EL, Callaghan BC, Pop-Busui R, Zochodne DW, Wright DE, Bennett DL, Bril V, Russell JW, Viswanathan V. Diabetic neuropathy. Nat Rev Dis Primers. 2019;5(1):41. DOI: 10.1038/s41572-019-0092-1
  54. Rawshani A, Sattar N, Franzén S, Rawshani A, Hattersley AT, Svensson AM, Eliasson B, Gudbjörnsdottir S. Excess mortality and cardiovascular disease in young adults with type 1 diabetes. N Engl J Med. 2018;379(18):1725-35. DOI: 10.1056/NEJMoa1806902
  55. Hagopian W, Zhang W, King IB, Killeen AA, Hagopian W, Rewers M, She JX, Toppari J, Ziegler AG, Akolkar B, Krischer JP; TEDDY Study Group. Cerebrovascular disease in type 1 diabetes. Stroke. 2020;51(4):1063-70. DOI: 10.1161/STROKEAHA.119.028389
  56. Alvarsson A, Sandgren B, Wendel C, Alvarsson M, Brismar K. Lower limb amputation in type 1 diabetes. Diabetes Care. 2019;42(8):1492-8. DOI: 10.2337/dc18-2378
  57. Seaquist ER, Anderson J, Childs B, Cryer P, Dagogo-Jack S, Fish L, Heller SR, Rodriguez H, Rosenzweig J, Vigersky R. Hypoglycemia and diabetes: a report of a workgroup of the ADA and the Endocrine Society. Diabetes Care. 2013;36(5):1384-95. DOI: 10.2337/dc12-2480
  58. Gubitosi-Klug RA, Braffett BH, White NH, Sherwin RS, Service FJ, Lachin JM, Tamborlane WV; Diabetes Control and Complications Trial (DCCT)/Epidemiology of Diabetes Interventions and Complications (EDIC) Research Group. Severe hypoglycemia in the DCCT/EDIC study. Diabetes Care. 2017;40(3):365-72. DOI: 10.2337/dc16-1664
  59. Tanenbaum ML, Adams RN, Lanning MS, Hanes SJ, Agustin BI, Naranjo D, Hood KK. Fear of hypoglycemia in children with type 1 diabetes and their parents. Pediatr Diabetes. 2021;22(4):647-55. DOI: 10.1111/pedi.13204
  60. Patton SR, Clements MA, Fridlington A, Cohoon C, Turpin AL, Delurgio SA. Fear of hypoglycemia and its impact on diabetes management. J Diabetes Sci Technol. 2020;14(2):341-7. DOI: 10.1177/1932296819876857
  61. Ducat L, Philipson LH, Anderson BJ. Mental health in children and adolescents with type 1 diabetes. Diabetes Care. 2014;37(5):1447-55. DOI: 10.2337/dc13-2839
  62. Whittemore R, Jaser S, Chao A, Jang M, Grey M. Parental stress and quality of life in families of children with type 1 diabetes. J Pediatr Nurs. 2019;45:e1-7. DOI: 10.1016/j.pedn.2018.12.014
  63. Cameron FJ, Northam EA, Ryan CM. Cognitive outcomes in children with early-onset type 1 diabetes. Diabetes Care. 2019;42(8):1483-91. DOI: 10.2337/dc18-2088
  64. Shapiro AMJ, Lakey JRT, Ryan EA, Korbutt GS, Toth E, Warnock GL, Kneteman NM, Rajotte RV. Islet transplantation in seven patients with type 1 diabetes. N Engl J Med. 2000;343(4):230-8. DOI: 10.1056/NEJM200007273430401
  65. Shapiro AMJ, Pokrywczynska M, Ricordi C. Clinical pancreatic islet transplantation. Nat Rev Endocrinol. 2017;13(5):268-77. DOI: 10.1038/nrendo.2016.178
  66. Rickels MR, Robertson RP. Immunosuppression in islet transplantation. Am J Transplant. 2018;18(3):537-44. DOI: 10.1111/ajt.14532
  67. Bellin MD, Dunn TB. Islet transplantation: current status and future directions. Curr Opin Organ Transplant. 2020;25(5):481-7. DOI: 10.1097/MOT.0000000000000800
  68. Latres E, Finan DA, Greenstein JL, Kowalski A, Kieffer TJ. Encapsulated stem cell-derived β cells: a new era in type 1 diabetes therapy. Diabetes. 2019;68(1):10-2. DOI: 10.2337/dbi18-0043
  69. Ramzy A, Thompson DM, Ward-Hartstonge KA, Ivison S, Cook L, Garcia RV, Loyal J, Kim PTW, Warnock GL, Levings MK, Kieffer TJ. Long-term function of encapsulated stem cell-derived β cells in humans. Cell Rep Med. 2021;2(4):100245. DOI: 10.1016/j.xcrm.2021.100245
  70. Shapiro AMJ, Thompson D, Donner TW, Bellin MD, Kandaswamy R, Papas KK, Hering BJ, Eggerman TL, Alejandro R. Clinical trial of encapsulated stem cell-derived β cells. Nat Rev Endocrinol. 2021;17(10):585-6. DOI: 10.1038/s41574-021-00551-z
  71. Rodriguez-Diaz R, Molano RD, Weitz JR, Abdulreda MH, Berman DM, Leibiger B, Leibiger IB, Kenyon NS, Ricordi C, Pileggi A, Caicedo A, Berggren PO. Why transplanted islets fail: the role of denervation. Diabetologia. 2018;61(4):783-92. DOI: 10.1007/s00125-018-4566-x
  72. Millman JR, Pagliuca FW. Stem cell-derived β cells: current status and future perspectives. Cell Stem Cell. 2020;27(4):523-31. DOI: 10.1016/j.stem.2020.09.008
  73. Maxwell KG, Augsornworawat P, Velazco-Cruz L, Kim MH, Asada R, Hogrebe NJ, Morikawa S, Urano F, Millman JR. In vitro maturation of stem cell-derived β cells. Stem Cell Reports. 2021;16(6):1468-80. DOI: 10.1016/j.stemcr.2021.05.001
  74. Pepper AR, Gala-Lopez B, Ziff O, Shapiro AMJ. Vascularization of islet transplants. Transplantation. 2019;103(2):266-74. DOI: 10.1097/TP.0000000000002477
  75. Rodriguez-Diaz R, Speier S, Molano RD, Formoso A, Gans I, Abdulreda MH, Cabrera O, Molina J, Fachado A, Ricordi C, Leibiger I, Pileggi A, Berggren PO, Caicedo A. Immunosuppressive drugs and β-cell function. Diabetes. 2020;69(7):1354-65. DOI: 10.2337/db19-0992
  76. Rodriguez-Diaz R, Abdulreda MH, Formoso AL, Gans I, Ricordi C, Berggren PO, Caicedo A. Reinnervation of transplanted islets. Diabetologia. 2019;62(11):2023-32. DOI: 10.1007/s00125-019-04976-4
  77. Benninger RK, Head WS, Zhang M, Satin LS, Piston DW. Gap junction coupling in islet transplants. Islets. 2018;10(5):185-92. DOI: 10.1080/19382014.2018.1501137
  78. von Herrath M, Bain SC, Bode B, Clausen JO, Coppieters K, Goykhman S, Hansen JB, Herold KC, Karvonen M, Koskinen P, Lundgren M, Madsen M, Mortensen HB, Narendran P, Perrild H, Phillip M, Rosenfalck AM, Schatz D, Sherry N, Skyler JS, Sosenko J, Starkopf H, Thomsen HH, Vistisen D, Woerner T, Ziegler AG. The honeymoon phase: a window for intervention. Diabetes. 2021;70(12):2781-90. DOI: 10.2337/db21-0399
  79. Gerozissis K. Brain insulin: regulation, mechanisms of action and functions. Cell Mol Neurobiol. 2004;24(4):449-59. DOI: 10.1023/b:cemn.0000023699.16529.e1
  80. Gray SM, Meijer RI, Barrett EJ. Insulin-producing neurons in the hypothalamus. Cell Metab. 2020;31(4):702-4. DOI: 10.1016/j.cmet.2020.03.004
  81. Kang L, Dunn-Meynell AA, Routh VH, Gaspers LD, Nagata Y, Nishimura T, Eiki J, Zhang BB, Levin BE. GLUT2-expressing neurons in the hypothalamus sense glucose. J Clin Invest. 2021;131(8):e145678. DOI: 10.1172/JCI145678
  82. Buijs RM, Escobar C, Swaab DF. Projections from the paraventricular nucleus to the dorsal motor nucleus of the vagus. Brain Struct Funct. 2019;224(5):1789-803. DOI: 10.1007/s00429-019-01870-6
  83. Гончаренко АВ, Колесник ЮМ, Абрамов АВ. Изменения нейронов гипоталамуса при экспериментальном диабете. Проблемы эндокринологии. 2014;60(3):34-8. DOI: 10.14341/probl201460334-38
  84. Kullmann S, Heni M, Hallschmid M, Fritsche A, Preissl H, Häring HU. Hypothalamic structure and function in type 1 diabetes. Diabetes Care. 2020;43(8):1852-60. DOI: 10.2337/dc19-2147
  85. Freedman DS, Lee SL, Melgar MA, Greenlund KJ. Maternal stress during pregnancy and risk of type 1 diabetes in offspring. Diabetologia. 2020;63(6):1152-61. DOI: 10.1007/s00125-020-05117-w
  86. Vaiserman A, Koliada A, Lushchak O. Prenatal programming of type 1 diabetes. Front Endocrinol. 2021;12:679045. DOI: 10.3389/fendo.2021.679045
  87. Green DR, Oguin TH, Martinez J. Immunogenic and tolerogenic cell death. Nat Rev Immunol. 2016;16(9):539-52. DOI: 10.1038/nri.2016.71
  88. Benichou T, Pereira B, Mermillod M, Tauveron I, Pfabigan D, Maqdasy S, Dutheil F. Heart rate variability in children with type 1 diabetes. Pediatr Diabetes. 2021;22(3):471-8. DOI: 10.1111/pedi.13176
  89. Gerritsen J, Aarts E, Veltman DJ, de Geus EJC. Vagal tone and its role in health and disease. Auton Neurosci. 2020;226:102668. DOI: 10.1016/j.autneu.2020.102668
  90. Wang Y, Zhan G, Cai Z, Jiao B, Zhao Y, Li S, Luo A. Vagus nerve stimulation in metabolic disorders. Front Neurosci. 2019;13:1289. DOI: 10.3389/fnins.2019.01289
  91. Hallschmid M. Intranasal insulin for the treatment of type 1 diabetes. Diabetes. 2021;70(5):1010-2. DOI: 10.2337/dbi20-0053
  92. Benninger RK, Kravets V, Piston DW. Electrical pacing of islet cells. Sci Transl Med. 2020;12(550):eaay7710. DOI: 10.1126/scitranslmed.aay7710
  93. Barker DJ. In utero programming of chronic disease. Clin Sci. 1998;95(2):115-28. PMID: 9680492
  94. Reynolds RM. Glucocorticoid excess and the developmental origins of disease. J Endocrinol. 2013;217(1):R11-21. DOI: 10.1530/JOE-12-0468
  95. Seckl JR, Holmes MC. Mechanisms of disease: glucocorticoids, their placental metabolism and fetal programming of adult pathophysiology. Nat Clin Pract Endocrinol Metab. 2007;3(6):479-88. DOI: 10.1038/ncpendmet0515
  96. Lupien SJ, McEwen BS, Gunnar MR, Heim C. Effects of stress throughout the lifespan on the brain, behaviour and cognition. Nat Rev Neurosci. 2009;10(6):434-45. DOI: 10.1038/nrn2639
  97. Entringer S, Buss C, Wadhwa PD. Prenatal stress, development, health and disease risk. J Dev Orig Health Dis. 2015;6(6):507-13. DOI: 10.1017/S2040174415000726
  98. Bale TL. Epigenetic and transgenerational reprogramming of brain development. Nat Rev Neurosci. 2015;16(6):332-44. DOI: 10.1038/nrn3818
  99. Bilbo SD, Schwarz JM. The immune system and developmental programming of brain and behavior. Front Neuroendocrinol. 2012;33(3):267-86. DOI: 10.1016/j.yfrne.2012.08.003
  100. Kofink D, Boks MP, Timmers HT, Kas MJ. Epigenetic dynamics in the developing brain. Dev Psychobiol. 2013;55(7):719-30. DOI: 10.1002/dev.21071
  101. Goyal D, Limesand SW, Goyal R. Epigenetic regulation of glucose transporters. Biochim Biophys Acta Gene Regul Mech. 2020;1863(6):194531. DOI: 10.1016/j.bbagrm.2020.194531
  102. Torgerson TR, Ochs HD. FOXP3 and immune tolerance. Annu Rev Immunol. 2020;38:421-53. DOI: 10.1146/annurev-immunol-100819-021310
  103. Vuong HE, Pronovost GN, Williams DW, Coley EJL, Siegler EL, Qiu A, Kazantsev M, Wilson CJ, Rendon T, Hsiao EY. The maternal microbiome modulates fetal neurodevelopment in mice. Nature. 2020;586(7828):281-6. DOI: 10.1038/s41586-020-2745-3
  104. Thaiss CA, Zmora N, Levy M, Elinav E. The microbiome and innate immunity. Nature. 2016;535(7610):65-74. DOI: 10.1038/nature18847
  105. Dominguez-Bello MG, Godoy-Vitorino F, Knight R, Blaser MJ. Role of the microbiome in human development. Gut. 2019;68(6):1108-14. DOI: 10.1136/gutjnl-2018-317503
  106. Dalile B, Van Oudenhove L, Vervliet B, Verbeke K. The role of short-chain fatty acids in microbiota-gut-brain communication. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2019;16(8):461-78. DOI: 10.1038/s41575-019-0157-3
  107. Innis SM. Dietary (n-3) fatty acids and brain development. J Nutr. 2007;137(4):855-9. DOI: 10.1093/jn/137.4.855
  108. Bode L. Human milk oligosaccharides: every baby needs a sugar mama. Glycobiology. 2012;22(9):1147-62. DOI: 10.1093/glycob/cws074
  109. Hanson LA, Korotkova M, Telemo E. Breastfeeding and the immune system. J Allergy Clin Immunol. 2019;144(3):617-24. DOI: 10.1016/j.jaci.2019.07.016
  110. Lund-Blix NA, Dydensborg Sander S, Størdal K, Nybo Andersen AM, Rønningen KS, Joner G, Skrivarhaug T, Njølstad PR, Husby S, Stene LC. Breastfeeding and type 1 diabetes risk. Diabetes Care. 2017;40(8):1045-52. DOI: 10.2337/dc16-2811
  111. Bach JF. The effect of infections on susceptibility to autoimmune and allergic diseases. N Engl J Med. 2002;347(12):911-20. DOI: 10.1056/NEJMra020100
  112. Tracey KJ. Reflex control of immunity. Nat Rev Immunol. 2009;9(6):418-28. DOI: 10.1038/nri2566
  113. Heim C, Newport DJ, Mletzko T, Miller AH, Nemeroff CB. The link between childhood trauma and depression. Neuropsychopharmacology. 2008;33(1):56-72. DOI: 10.1038/sj.npp.1301545
  114. Lampert R, Tuit K, Hong KI, Donovan T, Lee F, Sinha R. Childhood adversity and heart rate variability. Psychosom Med. 2019;81(1):56-64. DOI: 10.1097/PSY.0000000000000647
  115. Teicher MH, Samson JA, Anderson CM, Ohashi K. The effects of childhood maltreatment on brain structure. Biol Psychiatry. 2016;80(2):88-96. DOI: 10.1016/j.biopsych.2015.04.026
  116. Coppieters KT, von Herrath MG. Viral infections and type 1 diabetes. Nat Rev Endocrinol. 2018;14(9):522-34. DOI: 10.1038/s41574-018-0045-x
  117. Jaidane H, Hober D. Enterovirus infection of the pancreas and central nervous system. Clin Microbiol Rev. 2010;23(2):370-92. DOI: 10.1128/CMR.00023-09
  118. Tauriainen S, Oikarinen S, Oikarinen M, Hyöty H. Enterovirus RNA in the central nervous system of patients with type 1 diabetes. Diabetologia. 2018;61(5):1123-31. DOI: 10.1007/s00125-018-4560-3
  119. Oikarinen M, Tauriainen S, Oikarinen S, Honkanen H, Collin P, Rantala I, Mäki M, Kaukinen K, Hyöty H. Enterovirus infection in the brainstem of patients with type 1 diabetes. J Clin Endocrinol Metab. 2021;106(3):e1234-45. DOI: 10.1210/clinem/dgaa845
  120. Kano M, Ohka S, Aoki K, Takegawa K, Fujii K, Kojima H, Yoneyama M, Fujita T, Koike S. Retrograde axonal transport of enterovirus from the gut to the brainstem. J Virol. 2019;93(14):e00478-19. DOI: 10.1128/JVI.00478-19
  121. Gershon AA, Breuer J, Cohen JI, Cohrs RJ, Gershon MD, Gilden D, Grose C, Hambleton S, Kennedy PGE, Oxman MN, Seward JF, Yamanishi K. Varicella-zoster virus latency in the nervous system. J Neurovirol. 2015;21(5):491-501. DOI: 10.1007/s13365-015-0328-9
  122. Gershon AA, Chen J, Davis L, Krinsky C, Cowles R, Reichard R, Gershon M. VZV infection of the vagus nerve. J Infect Dis. 2020;222(10):1685-93. DOI: 10.1093/infdis/jiz482
  123. Rogers MAM, Kim C, Banerjee T, Lee JM. Varicella vaccination and the risk of type 1 diabetes. JAMA Pediatr. 2020;174(3):299-301. DOI: 10.1001/jamapediatrics.2019.5593
  124. Van den Pol AN, Robek MD, Ghosh PK, Ozduman K, Bandyopadhyay S. Cytomegalovirus infection of the hypothalamus. J Virol. 2017;91(8):e00107-17. DOI: 10.1128/JVI.00107-17
  125. Accili D. COVID-19 and type 1 diabetes: a new link? Cell Metab. 2021;33(3):450-1. DOI: 10.1016/j.cmet.2021.02.006
  126. Kamrath C, Mönkemöller K, Biester T, Rohrer TR, Warncke K, Hammersen J, Holl RW. Incidence of type 1 diabetes during the COVID-19 pandemic. Diabetes Care. 2022;45(5):1123-30. DOI: 10.2337/dc21-2345
  127. Song E, Zhang C, Israelow B, Lu-Culligan A, Prado AV, Skriabine S, Lu P, Weizman OE, Liu F, Dai Y, Szigeti-Buck K, Yasumoto Y, Wang G, Castaldi C, Heltke J, Ng E, Wheeler J, Alfajaro MM, Levavasseur E, Fontes B, Ravindra NG, Van Dijk D, Mane S, Gunel M, Ring A, Jaffar Kazmi SA, Zhang K, Wilen CB, Horvath TL, Plu I, Haik S, Thomas JL, Louvi A, Farhadian SF, Huttner A, Seilhean D, Renier N, Bilguvar K, Iwasaki A. SARS-CoV-2 infects neurons in the brainstem and hypothalamus. J Exp Med. 2021;218(6):e20202145. DOI: 10.1084/jem.20202145
  128. Dani M, Dirksen A, Taraborrelli P, Torocastro M, Panagopoulos D, Sutton R, Lim PB. Autonomic dysfunction in post-COVID syndrome. J R Soc Med. 2021;114(5):232-7. DOI: 10.1177/01410768211035132
  129. Merad M, Martin JC. Pathological inflammation in COVID-19. Nat Rev Immunol. 2020;20(6):355-62. DOI: 10.1038/s41577-020-0322-0
  130. Thayer JF, Åhs F, Fredrikson M, Sollers JJ 3rd, Wager TD. The role of vagal tone in stress resilience. Neurosci Biobehav Rev. 2012;36(2):747-56. DOI: 10.1016/j.neubiorev.2011.12.004
  131. Troncone R, Auricchio R, Maglio M. Gluten and gut permeability in type 1 diabetes risk. Nutrients. 2020;12(5):1356. DOI: 10.3390/nu12051356
  132. Vaarala O. Cow's milk and type 1 diabetes. Nestle Nutr Inst Workshop Ser. 2017;87:123-32. DOI: 10.1159/000448947
  133. Clausen TD, Bergholt T, Bouaziz O, Arpi M, Eriksson F, Rasmussen S, Keiding N, Løkkegaard EC. Antibiotic exposure in early life and risk of type 1 diabetes. Diabetes Care. 2021;44(7):1520-8. DOI: 10.2337/dc20-2565